Tierärztliche Hochschule Hannover
Erprobung des ‚Targeted Selective Treatment‘ zur
Endoparasitenbekämpfung bei Lämmern
INAUGURAL-DISSERTATION
zur Erlangung des Grades einer Doktorin der Veterinärmedizin
-Doctor medicinae veterinariae –
(Dr. med. vet.)
vorgelegt von
Caroline Stefanie Trapp
Bamberg
Hannover 2014
Wissenschaftliche Betreuung: Univ.-Prof. Dr. Martin Ganter
Klinik für kleine Klauentiere und forensische
Medizin und Ambulatorische Klinik,
Tierärztliche Hochschule Hannover
1. Gutachter: Univ.-Prof. Dr. Martin Ganter
2. Gutachter: Univ.- Prof. Dr. Christina Strube, PhD
Tag der mündlichen Prüfung: 16. Mai 2014
Für meine Liebsten
Teile dieser Arbeit wurden bereits auf folgenden Tagungen vorgestellt:
M. Ganter, C. Trapp, C. Strube (2013):
Erste Erfahrungen mit dem Targeted Selective Treatment
DVG Vet-Congress, Tagung der DVG-Fachgruppe „Krankheiten kleiner
Wiederkäuer“, Berlin
06.-07. 11. 2013
C. Trapp, C. Strube, M. Ganter (2014)
Erste Erfahrungen mit dem Targeted Selective Treatment unter niedersächsischen
Bedingungen
7. Leipziger Tierärztekongress, Workshop „kleine Wiederkäuer“, Leipzig
18.01.2014
M. Ganter, C. Trapp, J. Schöwerling (2014)
Bekämpfung von Magen-Darm-Strongyliden mit Targeted Selective Treatment-
Erfahrungen während zweier Weideperioden
Kleinwiederkäuertagung der schweizerischen Vereinigung für
Wiederkäuergesundheit, Zollikofen, Schweiz
13.02.2014
Inhaltsverzeichnis 1 Einleitung ........................................................................................................... 11
2 Literaturübersicht ............................................................................................... 13
2.1 Überblick über die für die Studie relevanten Endoparasiten des Schafes ... 13
2.1.1 Trichostrongyliden ................................................................................. 13
2.1.2 Strongyloides ........................................................................................ 13
2.1.3 Bunostomum ......................................................................................... 13
2.1.4 Oesophagostomum ............................................................................... 14
2.1.5 Chabertia .............................................................................................. 14
2.1.6 Trichuris ................................................................................................ 14
2.2 Anthelmintikaresistenz-Situation ................................................................. 14
2.3 Ursachen für Anthelmintikaresistenzen ....................................................... 16
2.4 Methoden zur Eindämmung der Resistenzproblematik ............................... 17
2.4.1 Schaffung von Refugien ........................................................................ 17
2.4.2 Verzicht auf „Dose and Move“............................................................... 19
2.4.3 Weidemanagement ............................................................................... 19
2.5 Targeted Selective Treatment (TST) ........................................................... 20
2.5.1 Anteil der behandelten/ unbehandelten Tiere ....................................... 21
2.5.2 Auswahlkriterien .................................................................................... 22
2.5.3 Auswirkungen des TST ......................................................................... 30
3 Material und Methoden ...................................................................................... 32
3.1 Schafbestand .............................................................................................. 32
3.1.1 Versuchstiere ........................................................................................ 32
3.1.2 Tiergruppen........................................................................................... 32
3.1.3 Weideflächen ........................................................................................ 33
3.2 Versuchsdurchführung ................................................................................ 34
3.2.1 Wiegungen ............................................................................................ 36
3.2.2 Kotprobenentnahme ............................................................................. 37
3.2.3 Scores ................................................................................................... 40
3.2.4 Anthelmintische Behandlungen............................................................. 43
3.2.5 Schlachtungen ...................................................................................... 44
3.2.6 Sentineltiere .......................................................................................... 45
3.2.7 Parasitologische Untersuchung der Magen-Darm-Konvolute postmortal ..
.............................................................................................................. 45
3.3 Statistik ........................................................................................................ 52
4 Ergebnisse ......................................................................................................... 53
4.1 Magen-Darm-Strongyliden-Eizahlen............................................................ 53
4.1.1 Verlauf .................................................................................................. 53
4.1.2 Vergleich der MDS-Eizahlen zwischen den Gruppen ........................... 55
4.2 Strongyloides-Eizahlen ................................................................................ 56
4.2.1 Verlauf .................................................................................................. 56
4.2.2 Vergleich der Strongyloides-Eizahlen zwischen den Gruppen .............. 58
4.3 Gewichte ..................................................................................................... 58
4.3.1 Verlauf .................................................................................................. 58
4.3.2 Vergleich der Gewichte zwischen den Gruppen ................................... 61
4.4 Tägliche Zunahmen ..................................................................................... 61
4.4.1 Verlauf .................................................................................................. 61
4.4.2 Vergleich der täglichen Zunahmen zwischen den Gruppen .................. 63
4.5 FAMACHA-Score ........................................................................................ 65
4.5.1 Verlauf .................................................................................................. 65
4.5.2 Vergleich des FAMACHA-Scores zwischen den Gruppen .................... 67
4.6 Body Condition Score (BCS) ....................................................................... 68
4.6.1 Verlauf .................................................................................................. 68
4.6.2 Vergleich des BCS zwischen den Gruppen .......................................... 70
4.7 Dag-Score ................................................................................................... 70
4.7.1 Verlauf .................................................................................................. 70
4.7.2 Vergleich des Dag-Score zwischen den Gruppen................................. 72
4.8 Korrelationen ............................................................................................... 73
4.8.1 Korrelation der täglichen Zunahmen mit der MDS- und Strongyloides-
EpG ....................................................................................................... 73
4.8.2 Korrelation des FAMACHA-Score mit den täglichen Zunahmen und der
MDS-EpG ............................................................................................. 75
4.8.3 Korrelation des Body Condition Score mit den täglichen Zunahmen, der
MDS- und der Strongyloides-EpG ......................................................... 79
4.8.4 Korrelation des Dag-Score mit den täglichen Zunahmen, der MDS- und
der Strongyloides-EpG .......................................................................... 83
4.9 Eizahlreduktionstests ................................................................................... 87
4.10 Differenzierung der Nematoden aus den parasitologischen Sektionen ....... 90
4.10.1 Labmagen ............................................................................................. 92
4.10.2 Dünndarm ............................................................................................. 94
4.10.3 Dickdarm ............................................................................................... 98
4.10.4 Auwertung ohne Trennung nach Darmabschnitten ............................. 100
4.11 Behandlungen im Rahmen des TST.......................................................... 104
4.12 Reduktion der Anzahl der Behandlungen und des Anthelmintikaeinsatzes 105
5 Diskussion ........................................................................................................ 106
5.1 Verwendete Methoden .............................................................................. 106
5.1.1 Auswahl der Tiere für das TST ........................................................... 106
5.1.2 Auswahl des Anthelmintikums und Resistenzproblematik .................. 115
5.2 Verlauf und Gruppenvergleich der während der Weideperiode erhobenen
Parameter .................................................................................................. 118
5.2.1 Tägliche Zunahmen und Gewichte ..................................................... 121
5.3 Differenzierung der Nematoden ................................................................ 122
5.4 Schlussfolgerung ....................................................................................... 124
6 Zusammenfassung........................................................................................... 126
7 Summary .......................................................................................................... 130
8 Literaturverzeichnis .......................................................................................... 133
9 Anhang ............................................................................................................. 141
9.1 Abbildungverzeichnis ................................................................................. 141
9.2 Tabellenverzeichnis ................................................................................... 143
Abkürzungsverzeichnis
°C Grad Celsius
µm Mikrometer
BCS Body Condition Score
DISCO Diarrhoe Score
EpG Eizahl pro Gramm Kot
et al. et alii (deutsch: und andere)
EU Europäische Union
EZR Eizahlreduktion
EZRT Eizahlreduktionstest
FAMACHA FAffa MAlan CHArt
FLI Friedrich Löffler Institut
FS Finnschaf
FU Berlin Freie Universität Berlin
g/d Gramm pro Tag
kg Kilogramm
KGW Körpergewicht
lCL unteres 95% Konfidenzintervall (lower confidence level)
Med Median
mg Milligramm
mg/kg Milligramm pro Kilogramm
ml Milliliter
mm Millimeter
MW Mittelwert
n Tieranzahl
NaCl Natrium-Chlorid
OpG Oozystenzahl pro Gramm Kot
p-Wert Signifikanzwert
R² Bestimmtheitsmaß
RT Random Treatment
S♀1/ S♀2 erstes und zweites weibliches Sentineltier
S♂1/ S♂2 erstes und zweites männliches Sentineltier
SAS Statistical Analysis System
SD Standardabweichung
SKF Schwarzköpfiges Fleischschaf
spp. Spezies
t Zeitpunkt
TST Targeted Selective Treatment
uCL oberes 95% Konfidenzintervall (upper confidence level)
Einleitung
11
1 Einleitung
Anthelmintikaresistenzen bereiten in der Schafhaltung weltweit große Probleme.
Sogar Multiresistenzen gegen zwei oder mehr Anthelmintikagruppen sind mittlerweile
keine Seltenheit mehr (CHANDRAWATHANI et al., 2003; BARTLEY et al., 2004;
SUTHERLAND et al., 2008; TAYLOR et al., 2009; CEZAR et al., 2010; VOIGT et al.,
2012).
Da alleinig die Entwicklung neuer Anthelmintikaklassen nicht ausreicht, um dieses
Problem zu lösen bzw. einzudämmen, benötigt es weiterer Strategien, die über die
reine Pharmakotherapie hinausgehen.
Hierzu zählen neben Maßnahmen wie Weidemanagement (BARGER, 1999;
ABBOTT et al., 2012) oder Verzicht auf bisher weitläufig angewandte Strategien, wie
das Dose and Move (VAN WYK, 2001), vor allem die Schaffung von Refugien für die
Endoparasiten (VAN WYK, 2001; BESIER, 2008; JACKSON & WALLER, 2008;
WAGHORN et al., 2008). Dies bedeutet, dass ein Teil der Wurmpopulation von
Anthelmintika unberührt bleibt, um hier eine Resistenzselektion zu vermeiden und
somit den Anteil empfänglicher Endoparasiten an der Gesamtpopulation zu erhöhen,
bzw. umgekehrt den der resistenten Würmer zu verringern (GABA et al., 2010).
Eine Methode zur Refugienerhaltung ist das Targeted Selective Treatment (TST),
eine Methode, bei der nur die Tiere der Herde behandelt werden, die unter dem
Parasitendruck leiden und dadurch Leistungseinbußen oder sonstige klinische
Auffälligkeiten zeigen.
In vielen Ländern weltweit liefen bereits Versuche zum Targeted Selective Treatment
unter Verwendung verschiedener Selektionsmethoden um die behandlungswürdigen
Tiere zu identifizieren (MALAN et al., 2001; HOSTE et al., 2002 a; HOSTE et al.,
2002 b; CABARET et al., 2006; KOOPMANN et al., 2006; LEATHWICK et al., 2006;
BROUGHAN & WALL, 2007; BATH & VAN WYK, 2009; CRINGOLI et al., 2009;
GALLIDIS et al., 2009; GREER et al., 2009; MOLENTO et al., 2009; STAFFORD et
al., 2009; BESIER et al., 2010; GABA et al., 2010; OUZIR et al., 2011; BENTOUNSI
Einleitung
12
et al., 2012; BUSIN et al., 2013; KENYON et al., 2013). In einigen Regionen ist
dieses Verfahren unter Zuhilfenahme des FAMACHA-Score bereits in der Praxis
etabliert (VAN WYK & BATH, 2002).
Unter den in Deutschland herrschenden Bedingungen ist das Targeted Selective
Treatment bisher nicht wissenschaftlich erprobt worden.
Ziel der vorliegenden Dissertation ist es, das Targeted Selective Treatment unter
niedersächsischen Bedingungen hinsichtlich Wirtschaftlichkeit und Praktikabilität zu
testen.
Hierzu wurden TST-Gruppen mit vierwöchentlich komplett behandelten Gruppen von
weiblichen und männlichen Mastlämmern hinsichtlich Mastleistung, Body Condition
Score, FAMACHA-Score, Dag-Score sowie Eiausscheidung miteinander verglichen.
Zusätzlich sind die Magen-Darm-Konvolute von Teilen jeder Gruppe nach der
Schlachtung auf Endoparasiten untersucht worden um die
Gattungszusammensetzung der Parasitenpopulation zu bestimmen.
Literaturübersicht
13
2 Literaturübersicht
2.1 Überblick über die für die Studie relevanten Endoparasiten des Schafes
2.1.1 Trichostrongyliden
Vertreter der Trichostrongyliden sind Nematoden der Gattungen Haemonchus
(H.contortus), Teladorsagia/ Ostertagia (v.a. T./ O. circumcincta, auch O. ostertagi,
O. trifurcata, O. marshalli, O. occidentalis ), Trichostrongylus (T. axei, T. vitrinus, T.
columbriformis, T. probolurus), Cooperia (C. curticei, C. oncophora) sowie
Nematodirus (N.battus, N. filicollis, N. spathiger). Diese parasitieren in Labmagen
und Dünndarm und liegen in der Regel als Mischinfektion vor. Die
Trichostrongylidose ist eine Weideinfektion, die in erster Linie Jungschafe betrifft.
Klinische Symptome sind vor allem Diarrhoe, Ödembildung, Abmagerung und
Entwicklungsstörungen. Die hämatophage Art Haemonchus contortus verursacht
Anämien (SCHNIEDER, 2006; HIEPE, 2009).
2.1.2 Strongyloides
Bei diesen sogenannten Zwegfadenwürmern (Strongyloides papillosus) parasitieren
nur die weiblichen Tiere im Wirt. Ansiedelungsort ist der Dünndarm. Klinische
Symptome in Form von Dyspnoe und Husten, gefolgt von Diarrhoe und Abmagerung,
treten nur bei Lämmern auf. Strongyloides-Infektionen verlaufen jedoch in der Regel
symptomlos (SCHNIEDER, 2006; HIEPE, 2009).
2.1.3 Bunostomum
Die Bunostomose ist eine durch Bunostomum trigonocephalum, selten auch B.
phlebotomum hervorgerufene Stallinfektion. Durch die perkutan eindringenden
Larven kommt es zu Hautirritationen an den entsprechenden Stellen. Adulte Würmer
parasitieren im Dünndarm und verursachen Diarrhoe, Anämie und Entwicklungs-
störungen. In gemäßigten Breiten liegen in der Regel nur sehr geringe
Literaturübersicht
14
Befallsintensitäten vor, weshalb in Deutschland die ökonomische Bedeutung gering
ist (SCHNIEDER, 2006; HIEPE, 2009).
2.1.4 Oesophagostomum
Oesophagostomum (O.venulosum, O. columbianum) parasitiert vor allem im
Dickdarm. Die akute durch Larvenstadien verursachte Phase äußert sich in Fieber,
Diarrhoe und Inappetenz. Aufgrund der larvenbedingten Knötchenbildung in der
Darmschleimhaut wird Oesophagostomum umgangssprachlich auch Knötchenwurm
genannt. Die Symptome der chronischen Phase, Leistungsminderung, Anorexie,
Durchfall und Anämie, werden durch adulte Würmer verursacht (SCHNIEDER, 2006;
HIEPE, 2009).
2.1.5 Chabertia
Chabertia ovina parasitiert im Dickdarm und befällt vor allem Lämmer. Klinische
Symptome sind Anämie, Diarrhoe, Ödembildung sowie Abmagerung (SCHNIEDER,
2006; HIEPE, 2009).
2.1.6 Trichuris
Die im Dickdarm parasitierenden, umgangssprachlich auch Peitschenwurm
genannten Trichuris-Arten T. ovis, T. globulosa und T. skrjabini verursachen nur bei
hochgradigem Befall klinische Symptome wie Diarrhoe, Inappetenz und Abmagerung
(HIEPE, 2009).
2.2 Anthelmintikaresistenz-Situation
Weltweit spielen Anthelmintikaresistenzen eine große Rolle (Zusammenfassung in
KAPLAN et al., 2004).
Sogar Multiresistenzen sind mittlerweile mehrfach nachgewiesen
(CHANDRAWATHANI et al., 2003; BARTLEY et al., 2004; SUTHERLAND et al.,
2008; TAYLOR et al., 2009). Diese haben bereits zum Teil ein verheerendes
Literaturübersicht
15
Ausmaß erreicht. Beispielsweise sind in Brasilien Fälle nachgewiesen worden, bei
denen keines der zu dem Zeitpunkt auf dem Markt erhältlichen Anthelmintika
ausreichend wirksam war (CEZAR et al., 2010). Ende 2009 konnte die Situation
durch die Zulassung des neuen Wirkstoffes Monepantel etwas entschärft werden.
Jedoch zeichnen sich bereits auch gegen diesen Wirkstoff vereinzelt verminderte
Wirksamkeiten ab. SCOTT et al. (2013) wies in Neuseeland Monepantel-resistente
Teladorsagia circumcincta und Trichostrongylus columbriformis nach.
Auch in Europa sind Resistenzen zunehmend verbreitet (Zusammenfassung in
JACKSON & COOP, 2000). In Zentralfrankreich konnten zum Beispiel gegen
Benzimidazole resistente Trichostrongylus axei nachgewiesen werden (PALCY et al.,
2010). In den Niederlanden wurden Doramectin-Resistenzen bei Haemonchus
contortus und Albendazol Resistenzen bei H. contortus, sowie Teladorsagia
circumcincta und Trichostrongylus spp. gefunden (BORGSTEEDE et al., 2007). Auch
in Deutschland spielen Anthelmintika-Resistenzen bei Schafen eine zunehmende
Rolle.
Erste Berichte über Benzimidazol-Resistenzen bei Haemonchus contortus von
Schafen in Deutschland wurden durch DÜWEL et al. 1987 und BAUER et al. 1988
publiziert.
PFÜLLER (1990) konnte bei Nematoden von Schafen und Pferden Benzimidazol-
Resistenzen nachweisen.
BAUER (2001) wies erstmals eine multispezifische Benzimidazolresistenz bei
Angoraziegen in Deutschland nach. Bei den resistenten Arten handelte es sich um
Haemonchus contortus, Teladorsagia circumcincta und Trichostrongylus
columbriformis.
Resistenzen gegen Levamisol und Mebendazol beim Schaf wurden durch DORN
(1997) nachgewiesen.
In einer Untersuchung von MORITZ (2005) wurden in 67% der untersuchten
Schafherden in Niedersachsen Benzimidazolresistenzen nachgewiesen.
Literaturübersicht
16
SCHEUERLE et al. (2009) wiesen in Süddeutschland und der Schweiz albendazol-
und oxfendazol-resistente Haemonchus contortus nach. Auch Moxidectin-
Resistenzen konnten in 17% der untersuchten Schafherden aus mehreren
Bundesländern bei Magen-Darm-Strongyliden nachgewiesen werden (PERBIX,
2008).
Auch Mehrfachresistenzen kommen hierzulande bereits vor. In einem Schafbetrieb in
Süddeutschland wurde eine Dreifachresistenz von Trichostrongylus spp. gegen
Albendazol, Ivermectin und Levamisol nachgewiesen (VOIGT et al., 2012).
2.3 Ursachen für Anthelmintikaresistenzen
Als Ursache für die Entwicklung der weit verbreiteten Anthelmintika-Resistenzen
werden verschiedene Faktoren verantwortlich gemacht.
Unumstritten ist die Rolle des Refugiums bei der Resistenzentwicklung. Das
Refugium ist der Anteil der Wurmpopulation, welcher keinem Anthelminthika-
Selektionsdruck unterliegt. So steigt die Selektion auf Resistenz deutlich an, wenn
anthelmintische Behandlungen in der Weise durchgeführt werden, dass das
bleibende Refugium sehr klein oder überhaupt nicht vorhanden ist (SILVESTRE et
al., 2002; BESIER & LOVE, 2003; GABA et al., 2006). Dies ist der Fall, wenn
grundsätzlich alle Tiere einer Herde regelmäßig behandelt werden.
Weniger eindeutig ist der Einfluss der Anthelmintika-Dosis. Sie ist mitverantwortlich,
aber nicht alleinig ausschlaggebend (BESIER & LOVE, 2003). Hierbei scheint der
Grad der Unterdosierung in Zusammenhang mit der schon vorhandenen
Resistenzallelfrequenz eine Rolle zu spielen. Bei geringem Resistenzgrad zu Beginn
ist diejenige Dosis gefährlich, die alle homozygot empfänglichen Helminthen tötet.
Hat sich bereits eine Resistenz etabliert, steigt die Selektion bei einer Dosis die
sowohl die homozygot empfänglichen, wie auch die Parasiten mit heterozygoten
Resistenzallelen tötet. Zudem spielen hierbei ebenfalls Faktoren wie Wirts-Immunität,
Fruchtbarkeit der Parasiten und die Überlebensrate der Parasitenlarven auf der
Weide eine Rolle (SMITH et al., 1999).
Literaturübersicht
17
Auch der Einfluss der Behandlungsfrequenz wird von Autoren unterschiedlich
eingeschätzt. BESIER & LOVE (2003) machen eine hohe Behandlungsfrequenz
mitverantwortlich für die Resistenzselektion. Auch GABA et al. (2006) sieht einen
deutlichen Zusammenhang zwischen Anzahl der Behandlungen und
Resistenzentwicklung. Nach SILVESTRE et al. (2002) führt eher der wiederholte
Einsatz der gleichen Anthelmintikafamilie als eine hohe Behandlungsfrequenz mit
alternierenden Familien zur Resistenzselektion.
Der Handel mit Zuchttieren sowie die gemeinsame Nutzung von Weideflächen durch
mehrere Herden kann erheblich zur Verbreitung resistenter Nematoden beitragen
(SILVESTRE et al., 2002).
2.4 Methoden zur Eindämmung der Resistenzproblematik
2.4.1 Schaffung von Refugien
Ein wichtiger Ansatz zur Reistenzbekämpfung auf nicht-chemischer Basis ist die
Schaffung von Refugien für die Endoparasiten (VAN WYK, 2001; BESIER, 2008;
JACKSON & WALLER, 2008; WAGHORN et al., 2008). Dies bedeutet, dass ein Teil
der Nematoden einem Anthelmintikum nicht ausgesetzt wird oder er nicht von ihm
beeinträchtigt wird, wodurch eine Selektion auf Resistenz unterbleibt (JACKSON &
WALLER, 2008). Dies kann zum Beispiel die sogenannte Suprapopulation, das heißt
freie Entwicklungsstadien auf der Weide (VAN WYK, 2001; GABA et al., 2006),
darstellen, oder aber die sogenannte Infrapopulation. Dies sind die parasitischen
Stadien in einem Wirt, wie histiotrophe Stadien bestimmter Parasitengattungen (z.B.
equiner Cyathostomiden) (VAN WYK, 2001) oder Nematoden in unbehandelten
Tieren (VAN WYK, 2001; JACKSON & WALLER, 2008). Die gegen Anthelmintika
sensiblen Parasiten aus den Refugien können dann die auf Resistenz selektierten
verdünnen (BARGER, 1999; GABA et al., 2010).
Die verschiedenen Möglichkeiten ein Refugium zu erhalten, werden in den folgenden
Kapiteln aufgezeigt.
Literaturübersicht
18
2.4.1.1 Targeted Treatment
Das Prinzip des Targeted Treatments besteht darin, die gesamte Herde nur zu
solchen Zeitpunkten zu behandeln zu denen ein ausreichendes Refugium auf der
Weide bestehen bleiben kann (KENYON et al., 2009). Umgekehrt werden
Behandlungsmaßnahmen zu Zeiten, zu denen die Zahl der Larven auf der Weide
niedrig ist, unterlassen, beispielsweise in den heißen, trockenen Sommern in
Australien (BESIER & LOVE, 2003).
2.4.1.2 Random Treatment (RT)
Um den Arbeitsaufwand der Identifizierung behandlungswürdiger Tiere zu umgehen,
behandelte GABA et al. (2012) 20% der Herde auf zufälliger Basis. In diesem
Versuch wurde durch den Einsatz des RT im Vergleich zum TST die Selektion auf
Resistenz noch weiter gesenkt. Allerdings konnte das TST die Infektionsrate besser
reduzieren. Die Gewichte der Tiere aus der RT-Gruppe waren nicht geringer als die
aus einer Gruppe, in der alle Tiere behandelt wurden. In diesem Versuch bestand die
Parasitenpopulation vor allem aus Teladorsagia circumcincta und Trichostrongylus
columbriformis, zum kleinen Teil auch aus Haemonchus contortus.
VAN WYK & BATH (2002) zeigen die deutlichen Nachteile des RT auf: Tiere, die
keine Behandlung benötigen werden entwurmt, während Tiere, die unter dem
Parasitendruck leiden, unbehandelt bleiben.
2.4.1.3 Targeted selective Treatment
Auf das Targeted Selective Treatment wird in Kapitel 2.5 eingegangen.
Literaturübersicht
19
2.4.2 Verzicht auf „Dose and Move“
Lange Zeit wurde das „Dose and Move“, also der Umtrieb der Tiere auf eine frische
Weide direkt nach der anthelmintischen Behandlung, zur Reduzierung starker
Reinfektion mit Endoparasiten empfohlen (z.B. BARGER, 1999).
Da das „Dose and Move“ jedoch das Refugium enorm einschränkt, indem durch die
Entwurmung unmittelbar vor einem Weidewechsel nur Eier resistenter Endoparasiten
durch die entwurmten Tiere auf eine frische Weide gelangen, was somit ganz
erheblich zur Resistenzentwicklung beiträgt, gilt es mittlerweile als obsolet und
dessen Anwendung wird strikt abgelehnt (VAN WYK, 2001).
Eine Alternative zum klassischen Dose and Move ist, den Umtrieb nach der
Behandlung um einige Tage zu verzögern. So können sich die Tiere noch auf der
alten Weide reinfizieren bevor sie auf eine frische Weide getrieben werden. Dadurch
wird die starke Resistenzselektion des Dose and Move entschärft, aber gleichzeitig
dessen Vorteil der Reduzierung der Parasitenbelastung genutzt (ABBOTT et al.,
2012). Dieses „verzögerte Move after Dose“ ist jedoch nicht anwendbar bei lang
wirksamen Präparaten wie Moxidectin oder bei Bolusbehandlungen, da hierbei die
Reinfektion über einen längeren Zeitraum verhindert wird (fünf Wochen bei
Moxidectin) (MOLENTO et al., 2004; ABBOTT et al., 2012). Als bessere
Vorgehensweise empfehlen MOLENTO et al. (2004) das „move then dose“. Das
bedeutet, dass die Tiere zuerst auf eine frische Weidefläche getrieben werden und
erst dann behandelt werden, wenn unselektierte Larven durch die Tiere auf die neue
Fläche verbracht worden sind.
2.4.3 Weidemanagement
Durch gezielten Weidewechsel soll die Parasitenbelastung für die hoch
empfänglichen Tiere verringert werden. Gleichzeitig wird dadurch auch einen
verringerter Einsatz von Anthelmintika erreicht. Dies kann auf verschiedene Arten
durchgeführt werden. Die für Endoparasitosen hoch empfänglichen Absatzlämmer
sollten zunächst auf wenig kontaminierten Flächen weiden während Mutterschafe mit
Literaturübersicht
20
bereits ausgebildeter Immunität auf hoch kontaminierte Flächen ausgetrieben
werden können und hier aufgrund ihrer Immunität sogar zu einer Verringerung der
Parasitenbelastung beitragen können (ABBOTT et al., 2012). Ebenfalls kann eine
verringerte Belastung durch Wechselbeweidung von Rindern oder Pferden und
Schafen erzielt werden (BARGER, 1999; ABBOTT et al., 2012).
Weiterhin kann eine Weiderotation, bei der die Weidestücke möglichst kurz beweidet
werden und dann länger unbeweidet bleiben, eine verringerte Nematodenbelastung
bewirken (BARGER, 1999). Als Beispiel nennt der Autor hier eine Rotation mit 15
Weideparzellen mit wöchentlichem Umtrieb, d.h. eine Parzelle wird eine Woche
beweidet und anschließend 14 Wochen unbeweidet gelassen. Bei der Festlegung
der Rotationszeit müssen jedoch einige Faktoren berücksichtigt werden. Im Idealfall
bleibt ein Abschnitt so lange unbeweidet, bis der Großteil der Larven aus der
vorhergehenden Beweidung abgestorben ist, was jedoch in gemäßigten Klimazonen
mit larvalen Überlebenszeiten von drei bis neun Monaten vermutlich nicht erreichbar
ist. Ebenfalls sollen Abschnitte nicht so lange leer stehen, dass die Vegetation
überaltert, aber auch nicht so lange und häufig beweidet werden, dass der Aufwuchs
Schaden nimmt. Die Tiere sollten umgetrieben werden bevor sie sich auf der einen
Weide re-infizieren, was unter Umständen bereits nach vier bis fünf Tagen der Fall
sein kann (BARGER, 1999).
Gleichzeitig zur Reduktion der Parasitenbelastung soll jedoch auch eine moderate
Exposition der Tiere zu Endoparasiten erzielt werden, um die Ausbildung und
Erhaltung einer Immunität der Schafe gegenüber der Magen-Darm-Strongyliden zu
erreichen (ABBOTT et al., 2012).
2.5 Targeted Selective Treatment (TST)
Beim Targeted Selective Treatment sollen möglichst nur die Tiere behandelt werden,
die eine Behandlung benötigen, die also am anfälligsten für eine klinische
Endoparasitose sind (KENYON et al., 2009). So wird ein Refugium in unbehandelten
Tieren geschaffen (BESIER, 2008).
Literaturübersicht
21
Voraussetzung für das TST ist die Identifizierung der zu behandelnden Tiere. Die
möglichen Auswahlkriterien hierfür sind in Kapitel 2.5.2 aufgeführt.
Durch das TST ist es möglich, den Anthelmintika-Einsatz deutlich zu reduzieren
(CRINGOLI et al., 2009; GALLIDIS et al., 2009; GABA et al., 2010), ebenso wird die
Selektion der Endoparasiten auf Anthelmintika-Resistenz verringert (GABA et al.,
2010). Gleichzeitig wird die Leistung der Tiere (Milch-, Mastleistung, Wollproduktion)
erhalten (CRINGOLI et al., 2009; GALLIDIS et al., 2009; KENYON et al., 2009;
BESIER et al., 2010; GABA et al., 2010).
Als Folge des TST-Einsatzes kann sich die Eiausscheidung der Tiere erhöhen
(GABA et al., 2010), was einerseits bedeutet, dass die Wiederansteckungsgefahr der
Tiere erhöht wird, andererseits wird durch die erhöhte Weidekontamination das
Refugium deutlich vergrößert, was im Sinne des TST ist und sich positiv auf die
Eindämmung der Resistenzentwicklung auswirkt (JACKSON & WALLER, 2008).
2.5.1 Anteil der behandelten/ unbehandelten Tiere
Bei der Frage, wie groß der Anteil der Tiere ist, die behandelt werden bzw.
unbehandelt bleiben muss ein Mittelweg zwischen effektiver Parasitenkontrolle und
niedriger Selektionsrate auf Anthelmintikaresistenz gefunden werden. Nach GABA et
al. (2012) ist dies bei Behandlung von 20-40% einer Herde der Fall. Hierbei bezieht
sich der Autor jedoch auf Gegebenheiten, bei denen die Population hauptsächlich
aus den mäßig pathogenen Spezies Trichostrongylus sp. und Teladorsagia sp.
besteht. 2010 zeigte GABA et al. (2010), dass der Anteil der Herde, der behandelt
wird, für eine Erhaltung der Anthelmintikasensibilität umso kleiner sein muss, je
größer die Herde ist (Behandlung von 30% bei 750 Tieren, Behandlung von 20% bei
1000 Tieren).
LEATHWICK et al. (2006) ließ in seiner Studie in der TST-Gruppe lediglich die
schwersten 10% Gruppe unbehandelt und verglich dieses Modell mit einer komplett
behandelten Gruppe und einer, in der die Tiere bei einer EpG von über 500
behandelt wurden. Zwischen den Gruppen stellte er keinen signifikanten Unterschied
Literaturübersicht
22
in der Leistung fest, jedoch zeigten die unbehandelten Tiere in der TST-Gruppe
verglichen mit den behandelten signifikant geringere Tageszunahmen.
2.5.2 Auswahlkriterien
Der ideale TST-Indikator ist kostengünstig, einfach anzuwenden, dem Anwender
schnell beizubringen und macht eine Behandlungsentscheidung direkt am Tier
möglich (KENYON et al., 2009). Ebenso wichtig für eine erfolgreiche Durchführung
des TST ist die sichere Identifizierung der behandlungswürdigen Tiere (GABA et al.,
2010).
2.5.2.1 Body Condition Score (BCS)
Anhand des Body Condition Score wir per Palpation der Dorn- und Querfortsätze der
Lendenwirbelsäule der Ernährungszustand der Tiere beurteilt und auf einer Skala
von 1 bis 5 eingeordnet, wobei der Score 1 für „abgemagert“ und der Score 5 für
„adipös“ steht (J. THOMPSON, 1984).
Der BCS hat als TST-Indikator sowohl Vor-als auch Nachteile.
Die Vorteile sind die schnelle und einfache Durchführbarkeit und die Tatsache, dass
mit Ausnahme der Arbeitskosten keine weiteren Kosten anfallen (VAN WYK & BATH,
2002; MOLENTO et al., 2011).
Ein großer Nachteil des BCS in fünf Stufen ist die gering Sensitivität und die geringe
Spezifität für parasitäre Infektionen. Die Körperkondition kann neben
Mangelernährung auch durch eine ganze Reihe von Krankheiten beeinflusst werden.
Zudem ist er bei jungen, wachsenden Tieren schwer zu beurteilen (BESIER, 2008).
Ebenfalls nachteilig ist die grobe Skala des Scores (BESIER, 2008), weshalb die
Unterteilung in halbe oder gar Viertel Schritte als sinnvoll erachtet wird (BATH & VAN
WYK, 2009).
Die Korrelation des BCS zur Wurmbürde bzw. seine Tauglichkeit
behandlungswürdige Tiere zu identifizieren wird unterschiedlich eingeschätzt. In
einer Studie von OUZIR et al. (2011) konnten keine deutliche Korrelation zwischen
Literaturübersicht
23
BCS und Eizahl pro Gramm Kot gezeigt werden, weshalb dieser Autor die
Verwendung des Scores als TST-Indikator ablehnt. GALLIDIS et al. (2009) ziehen
den BCS als Option in Betracht, schätzen ihn aber als weniger vielversprechend im
Vergleich zur EpG oder zur Milchleistung ein.
Trotz der Beeinflussbarkeit des BCS durch sehr viele Faktoren schließen Autoren ihn
als TST-Indikator nicht aus, sondern ziehen seine Anwendung vor allem in Herden
von Schäfern mit wenig finanziellen Mitteln, bei denen insbesondere das Wiegen
nicht infrage kommt bzw. möglich ist, in Betracht (VAN WYK & BATH, 2002; BATH &
VAN WYK, 2009).
Auch MOLENTO et al. (2011) hält den BCS, trotz seiner geringen Spezifität, für eine
günstige und praktikable Methode behandlungswürdige Tiere zu identifizieren, die
durch die Endoparasitose Zeichen verminderter Futterverwertung, Dehydratation
und/ oder Anorexie aufweisen.
2.5.2.2 Tägliche Zunahmen
Die täglichen Zunahmen haben sich vor allem in gemäßigten Zonen bisher als recht
geeigneter TST-Indikator erwiesen (BESIER, 2008; STAFFORD et al., 2009; GABA
et al., 2010).
Sie sind relativ schnell und einfach sowie nicht-invasiv zu ermitteln und auch
gegenüber Kurzzeitänderungen empfindlich (BESIER, 2008; STAFFORD et al.,
2009). Zudem ist die Tiererkennung durch die in der EU mittlerweile verpflichtende
elektronische Einzeltierkennzeichnung mittels Transponder-Ohrmarke (ViehVerkV §
34 (3)) deutlich vereinfacht und es besteht dadurch auch die Möglichkeit zur
Anwendung voll automatischer Wiegeeinrichtungen und der Aufzeichnung mittels
PC-Systemen (STAFFORD et al., 2009). Ein weiterer Vorteil ist der Nutzen dieser
Daten für den Landwirt über die Parasitenkontrolle hinaus als Leistungsdaten
(STAFFORD et al., 2009).
Positiv ist auch der Aspekt, dass wirtschaftliche Einbußen ausbleiben, sollte ein Tier
mit hoher Wurmbürde keine Behandlung erhalten. Denn in diesem Fall zeigt das
Literaturübersicht
24
entsprechende Tier trotz des Endoparasitenbefalls gute tägliche Zunahmen, was
bedeutet, dass es widerstandsfähig gegenüber einer Endoparasitose ist. Der
scheinbar einzige Nachteil hierbei ist die dadurch entstehende erhöhte
Weidekontamination, was aber aus dem Gesichtspunkt der Refugienbildung bzw. –
erhaltung einen positiven Effekt darstellt (STAFFORD et al., 2009).
Auch nach GABA et al. (2010) sind die täglichen Zunahmen als Indikator geeignet,
um das TST durchzuführen ohne Produktionseinbußen hinzunehmen. Zudem wird
dabei die Resistenzbildung verlangsamt.
Als großer Nachteil sind die hohen Anschaffungskosten für das Equipment
anzusehen (STAFFORD et al., 2009), was die Anwendung der täglichen Zunahmen
für viele Landwirte ausschließt.
Zudem muss man einen möglichen Einfluss der Ernährungssituation in Betracht
ziehen und ggf. ausschließen (BESIER, 2008).
In Ländern mit jahreszeitlich sehr hoher Parasitenbelastung, die eine wöchentliche
Kontrolle nötig macht, ist das Wiegen der Tiere in den Intervallen aufgrund der
Zeitintensivität nicht durchführbar und nicht kosteneffektiv (VAN WYK & BATH,
2002).
In Steppenregionen scheinen die täglichen Zunahmen kein geeigneter Indikator zu
sein um behandlungswürdige Tiere sicher zu identifizieren. Sie zeigten weder eine
signifikante Korrelation zu der Intensität der Parasitenbelastung (EpG) noch zu
FAMACHA- und Diarrhoe-Score (BENTOUNSI et al., 2012).
2.5.2.3 „Happy Factor“
Bei der Verwendung der täglichen Zunahmen als TST-Indikator muss berücksichtigt
werden, dass neben Endoparasitose auch Faktoren, wie der Entwicklungsstand,
Körpegröße und Umweltfaktoren die Gewichtsentwicklung beeinflussen können
(GREER et al., 2009). Um diese nicht-parasitären Faktoren zu berücksichtigen und
diejenigen Tiere zu identifizieren, die tatsächlich Endoparasitose-bedingte
Leistungseinbußen zeigen, entwickelten GREER et al. (2009) ein TST-
Literaturübersicht
25
Indikatormodell, das sowohl die täglichen Zunahmen, die Temperatur, als auch die
verfügbare Energie aus dem Futter (unter Berücksichtigung von Weideaufwuchs, ggf.
Aufnahme von Milch und der Kapazität des Verdauungstraktes) berücksichtigt. So
werden die Lämmer erkannt die nicht so viel leisten wie sie unter den gegebenen
Umständen (Klima, Futter) könnten. Tiere, deren sogenannter „Happy factor“ unter
einem bestimmten Grenzwert liegt, werden behandelt. Anhand dieses Modelles ist es
möglich, die Tiere zu identifizieren, die von der anthelmintischen Behandlung
profitieren während gleichzeitig der Anthelmintika-Einsatz reduziert wird und die
Produktivität erhalten bleibt.
Auch in Folgestudien wurde der „Happy Factor“ erfolgreich getestet. In einer
Untersuchung von KENYON et al. (2013) konnte bei erhaltenem Refugium und
verlangsamter Resistenzbildung die Produktivität der Tiere erhalten werden.
BUSIN et al. (2013) gelang bei Anwendung des „Happy factor“ eine Anthelmintika-
Reduktion um 50% ohne dabei Einbußen in den täglichen Zunahmen und
Schlachtgewichten verzeichnen zu müssen. Auch blieb die mittlere EpG trotz der
reduzierten Anzahl der Behandlungen stets bei unter 500.
2.5.2.4 Gewicht
LEATHWICK et al. (2006) wählte seine Tiere für das TST nach Gewicht aus. Er ließ
die schwersten 10% unbehandelt. Es resultierte eine erhöhte Weidekontamination
und geringradige Produktionseinbußen, die allerdings noch akzeptabel seien.
2.5.2.5 FAMACHA
Der FAMACHA-Score ist der am meisten etablierte TST-Indikator, der so weit erprobt
ist, dass er in der Praxis einsetzbar ist (VAN WYK & BATH, 2002). Das Akronym
FAMACHA steht für FAffa MAlan CHArt, entwickelt von Francois Malan, Gareth Bath
und Jan van Wyk (BATH et al. 1996). Bei Anwendung des FAMACHA-Score wird die
Farbe der Lidbindehäute der Tiere beurteilt, die mit dem Hämatokrit der Tiere
korreliert (VAN WYK & BATH, 2002). Die Einteilung erfolgt auf einer Skala von 1 bis
Literaturübersicht
26
5, wobei 1 der Färbung „rot“ und 5 der Färbung „weiß“ entspricht (MALAN et al.,
2001).
Er ist ein effektiver Indikator bei Wurmpopulationen, die hauptsächlich aus
Haemonchus contortus bestehen, so zum Beispiel in Südafrika, Algerien
(BENTOUNSI et al., 2012) und den USA (KAPLAN, 2004). Haemonchus als
blutsaugende Endoparasitengattung senkt den Hämatokrit (Htk) des Wirtstieres ab.
Dieser korreliert signifikant mit der Färbung der Lidbindehäute, was bei dem
FAMACHA-Score Anwendung findet. So entspricht ein Htk von 35% dem Score 1,
25% dem Score 2, 20% dem Score 3, 15% dem Score 4 und 10% dem Score 5
(VAN WYK & BATH, 2002).
Besteht allerdings die Parasitenpopulation nur zu einem geringen Teil aus
Haemonchus, wie z.B. in Norddeutschland, hat der FAMACHA-Score keine
ausreichende Aussagekraft über die Höhe der Wurmbürde des Tieres und ist somit
als TST-Indikator weniger geeignet (KOOPMANN et al., 2006).
So kann der FAMACHA-Score die Zahl der anthelmintischen Behandlungen und
somit den Medikamentenverbrauch deutlich reduzieren (MALAN et al., 2001; VAN
WYK & BATH, 2002; MOLENTO et al., 2009; BENTOUNSI et al., 2012), was zum
Einen direkte ökonomische Vorteile für den Landwirt hat, sich aber auch positiv auf
die Erhaltung des Refugiums auswirkt und somit die Resistenzselektion senkt
(MALAN et al., 2001; BENTOUNSI et al., 2012). Lediglich in einer Studie aus
Marokko konnte zwar ein deutlicher Zusammenhang zwischen FAMACHA und EpG
festgestellt, aber durch den Einsatz dieses Indikators die Behandlungshäufigkeit
nicht gesenkt werden (OUZIR et al., 2011).
Ein weiterer Vorteil des FAMACHA Score liegt in der Möglichkeit, mit Hilfe dieses
Scores auf eine endoparasitose-resistentere Schafherde zu züchten, indem man
Tiere, die wiederholt schlechte FAMACHA-Werte zeigen, aus der Zucht nimmt und
merzt (MALAN et al., 2001; VAN WYK & BATH, 2002).
Zu guter Letzt ist der FAMACHA Score sehr einfach in der Anwendung. Er ist am
Tier schonend und schnell zu ermitteln (KOOPMANN et al., 2006). Zudem ist die
Literaturübersicht
27
Anwendung auch Laien, sogar ungebildeten Personen bzw. Analphabeten, sehr
schnell und einfach beizubringen, was ihn auch für Landwirte mit wenigen
finanziellen Mitteln in Entwicklungsländern verwendbar macht (VAN WYK & BATH,
2002; KOOPMANN et al., 2006; VAN WYK et al., 2006).
2.5.2.6 Dag/ DISCO
Beim Dag-Score und dem Diarrhoe-Score (DISCO) handelt es sich um zwei Scores
zur Beurteilung der Kotkonsistenz.
Der Dag-Score beurteilt die Verschmutzung der Wolle in der Analregion und besteht
aus einer sechsstufigen Skala, bei der der Wert 0 komplett sauberer Wolle und der
Wert 5 einer hochgradig verschmutzten Analregion entspricht (YOUNG, 2006).
Anhand des DISCO wird die Kotkonsistenz direkt rektal entnommener Kotproben
beurteilt. Die Skala ist dreistufig, wobei 1 normalem geformtem Schafkot und 3
wässriger Diarrhoe entspricht (CABARET et al., 2006).
Diarrhoe ist ein häufiges Symptom bei Befall mit nicht-hämatophagen
Endoparasitenspezies (BESIER, 2008), vor allem bei Teladorsagia, Nematodirus
sowie Marshallagia (BENTOUNSI et al., 2012).
Sowohl der Dag-Score (LEATHWICK et al., 2006; BROUGHAN & WALL, 2007) als
auch der DISCO (CABARET et al., 2006; OUZIR et al., 2011; BENTOUNSI et al.,
2012) sind dazu geeignet, Tiere mit hoher EpG bzw. Wurmbürde zu erkennen und
dementsprechend ihnen bei Anwendung des TST eine Behandlung zu verabreichen.
Dadurch ist es möglich, die Zahl der Behandlungen deutlich zu reduzieren (OUZIR et
al., 2011).
Nachteilig bei Dag und DISCO ist, dass Diarrhoe nicht Endoparasitose-spezifisch ist,
sondern auch durch andere Erkrankungen, sowie Ernährungsfehler hervorgerufen
werden kann (BESIER, 2008).
Zudem ist die Erhebung des DISCO durch die erforderliche rektale Entnahme von
Einzeltierkotproben recht zeit- und arbeitsintensiv, was seine Anwendung in
Literaturübersicht
28
größeren Herden limitiert (CABARET et al., 2006; BENTOUNSI et al., 2012). Dies ist
beim Dag-Score nicht der Fall.
2.5.2.7 Milchleistung
Bei milchliefernden Herden kann die Milchleistung als TST-Indikator heran gezogen
werden. HOSTE et al. (2002 a; 2002 b) testete das TST auf Basis der Milchleistung
an Ziegen. Entwurmt wurden alle Tiere in der ersten Laktation sowie ein Drittel der
Tiere in späteren Laktationen mit der höchsten Milchleistung. Das entsprach
insgesamt etwa 50-66% der Herde. Damit konnte die Parasitenbelastung gut
kontrolliert werden, die EpG unterschied sich nicht im Vergleich zu systematischer
Behandlung aller Tiere. Dies zeigt, dass das Vorhandensein einer etablierten Magen-
Darm-Nematodenpopulation die Immunantwort auf neu aufgenommene Larven
positiv beeinflusst.
Ebenfalls konnte kein nachteiliger Effekt auf die Milchleistung der Herde beobachtet
werden. Zudem ergaben sich ökonomische Vorteile durch die verminderte Anzahl an
Behandlungen.
2.5.2.8 Eizahl pro Gramm Kot (EpG)
Die Ermittlung der EpG ist ein Indikator der zuverlässig die Tiere heraus findet, die
nicht mit einer hohen Wurmbürde klar kommen (GALLIDIS et al., 2009). Setzt man
die EpG in der Weise ein, dass diejenigen Tiere behandelt werden, deren EpG einen
bestimmten Grenzwert überschreitet (z.B. 300 EpG), ist es möglich, die
Behandlungskosten zu reduzieren und gleichzeitig eine effektive Parasitenkontrolle
bei gleicher Produktivität durchzuführen (GALLIDIS et al., 2009).
Bei Behandlung der gesamten Gruppe bei einer mittleren EpG von über 500 konnte
die Anzahl der Behandlungen, verglichen mit einer Kontrollgruppe, die alle 28 Tage
behandelt wurde, nur um eine Behandlung gesenkt werden. Zudem konnte trotz
vermehrt ausgeschiedener Eier die Wurmpopulation auf der Weide nicht vergrößert
werden, was keinen Vorteil hinsichtlich Refugienerhaltung mit sich brachte. Immerhin
Literaturübersicht
29
konnten in dieser Studie keine Einbußen in den täglichen Zunahmen oder der
Wolleproduktion beobachtet werden (LEATHWICK et al., 2006).
Die EpG als TST-Indikator bringt allerdings auch einen ganz entscheidenden
Nachteil mit sich. Die Behandlungsentscheidung kann nicht direkt am Tier getroffen
werden. Denn nach Entnahme von Einzeltierkotproben müssen diese im Labor
untersucht werden. Anschließend ist eine Rückkehr auf den Hof und ein erneutes
Zusammentreiben der Herde vonnöten. Erst nach Heraussuchen der
entsprechenden Tiere können diese dann behandelt werden. Dies bedeutet einen
erheblich erhöhten Arbeitsaufwand, was die Anwendung der EpG als TST-Indikator
für die Praxis stark einschränkt oder gar ausschließt (GALLIDIS et al., 2009;
KENYON et al., 2009; RINALDI & CRINGOLI, 2012). Hinzu kommen die hohen
Kosten für die parasitologischen Untersuchungen der Einzeltierkotprobe.
2.5.2.9 Five Point Check©
BATH & VAN WYK (2009) haben den sogenannten „Five Point Check©“ entwickelt,
bei dem mehrere Parameter in Kombination genutzt werden. Dies hat den Sinn,
behandlungswürdige Tiere auch bei gemischten Parasitenpopulationen sicherer
herauszufinden und somit Produktionseinbußen vorzubeugen. Der Five Point Check
umfasst folgende Untersuchungspunkte:
Nase: Überprüfung auf Vorhandensein von Nasenausfluss als Zeichen
für einen Befall mit Oestrus ovis (Nasendassel)
Auge: Farbe der Konjunktiven: FAMACHA-Score
Unterkiefer: Überprüfung auf Vorhandensein von Kehlangsödemen durch
Hypoproteinämie verursachende Endoparasitosen wie
Fasciolose oder Trichostrongylose
Rücken: BCS
Schwanz: Dag-Score
Die Autoren schließen gewisse Modifikationen nicht aus. So halten sie es für sinnvoll,
weitere Beobachtungen am Tier, die auf Endoparasitose hinweisen können (z.B.
Literaturübersicht
30
dicker Bauch bei schlechtem BCS) mit einzubeziehen. Zudem kann das Erheben
oder Auslassen einzelner Punkte je nach Situation (z.B. Jahreszeit) angepasst
werden.
2.5.3 Auswirkungen des TST
2.5.3.1 Auswirkungen des TST auf die Resistenzentwicklung
Durch den Einsatz des TST wird die Resistenzbildung deutlich verlangsamt, da ein
Refugium erhalten bleibt (KAPLAN et al., 2004). Bei der regelmäßigen Behandlung
aller Tiere steigt der Resistenzlevel deutlich an, während es beim TST deutlich
niedriger bleibt. So konnten GABA et al. (2010) in der Gruppe, die komplett alle 4
Wochen mit Fenbendazol behandelt wurde, resistente Trichostrongylus
columbriformis nachweisen, während dies in der TST-Gruppe nicht der Fall war.
Auch in einer Studie von WAGHORN et al. (2008) zeigte die komplett behandelte
Gruppe ein signifikant höheres Resistenzlevel, während das der TST-Gruppen gleich
oder niedriger war als zu Beginn des Versuches.
KENYON et al. (2013) untersuchten den Effekt des TST auf die
Resistenzentwicklung gegen Ivermectin über fünf Jahre. Am Ende des
Untersuchungszeitraums konnte bei Komplettbehandlung der Herde eine
Wirksamkeitsverminderung um rund 33% nachgewiesen werden, während sie bei
Anwendung des TST lediglich 9% betrug.
2.5.3.2 Auswirkungen des TST auf die Leistung der Tiere
In mehreren Studien hat sich gezeigt, dass auch bei Anwendung des TST die
Produktivität der Tiere erhalten werden kann. Bezüglich der täglichen Zunahmen
konnte mehrfach gezeigt werden, dass diese bei TST-Gruppen nicht geringer ist als
bei Gruppen, die komplett behandelt werden (LEATHWICK et al., 2006; STAFFORD
et al., 2009; GABA et al., 2010; KENYON et al., 2013). Gleiches gilt für die
Vliesproduktion (LEATHWICK et al., 2006). Bezüglich der täglichen Zunahmen
innerhalb der TST-Gruppe beim Vergleich der behandelten Tiere mit den
Literaturübersicht
31
unbehandelten wurden unterschiedliche Erfahrungen gemacht. In der Studie von
LEATHWICK et al. (2006) zeigten innerhalb der TST-Gruppe die unbehandelten
Tiere etwas niedrigere tägliche Zunahmen als die behandelten Tiere und das obwohl
in der TST-Gruppe nur 10% unbehandelt blieben. STAFFORD et al. (2009) konnten
in dieser Hinsicht keine signifikanten Unterschiede feststellen. Auch in einer Studie
von VAN WYK & BATH (2002) lagen die Zunahmen von behandelten und
unbehandelten Tieren auf gleichem Niveau.
Auch in Milchherden wurde das TST eingesetzt, ohne Einbußen in der Milchleistung
feststellen zu können (HOSTE et al., 2002 a; HOSTE, 2002 b).
2.5.3.3 Auswirkungen des TST auf die Höhe der Wurmbürde/ EpG der Tiere
Bei einigen Studien zeigt sich erwartungsgemäß eine höhere EpG der Gruppen bei
denen das TST Anwendung gefunden hat, verglichen mit Gruppen, die komplett
behandelt wurden, und daraus resultierend eine höhere Weidekontamination
(LEATHWICK et al., 2006; BESIER, 2008; BESIER et al., 2010; GABA et al., 2010).
WAGHORN et al. (2008) konnten jedoch keinen Unterschied zwischen der EpG der
TST- und der Kontrollgruppe feststellen.
Dennoch können die EpG durch das TST trotz der reduzierten Anzahl der
Behandlungen gesenkt werden (GALLIDIS et al., 2009).
2.5.3.4 Auswirkungen des TST auf die Anzahl der Behandlungen
Durch Anwendung des TST ist eine deutliche Reduktion der Zahl der Behandlungen
bzw. der eingesetzten Menge an Anthelmintika möglich. In Studien wurden
Reduktionen von 40 bis 60% (CRINGOLI et al., 2009; GALLIDIS et al., 2009), sogar
bis 90% (GABA et al., 2010) erreicht. Hieraus resultiert neben dem positiven Effekt
auf die Wirksamkeitserhaltung auch ein ökonomischer Vorteil durch reduzierte
Arzneimittelkosten (HOSTE et al., 2002 b).
Material und Methoden
32
3 Material und Methoden
3.1 Schafbestand
Die Untersuchungen wurden im Jahr 2012 mit Schafen und auf den Flächen des
Instituts für Nutztiergenetik des Friedrich-Löffler-Institutes (FLI) Mariensee, Standort
Mecklenhorst/ Neustadt am Rübenberge durchgeführt. Die Herde des Betriebs
besteht aus Schwarzköpfigen Fleischschafen (SKF), zum Teil mit Einkreuzung von
Finnschafen (FS).
Die Tiere werden in der Weidesaison (etwa Mai bis Oktober) in Koppelhaltung mit
Umtriebsweide gehalten. Den Rest des Jahres sind die Tiere in einem Kaltstall auf
Stroh aufgestallt.
3.1.1 Versuchstiere
Der Versuch wurde an 94 weiblichen und 92 männlichen Lämmern der Rasse SKF
und Kreuzungen aus SKF und FS durchgeführt. Alle Lämmer wurden im Februar
2012 geboren.
Die Tiere waren individuell mit jeweils zwei Ohrmarken, davon einer Transponder-
Ohrmarke, gemäß Viehverkehrsverordnung §34 Absatz 3, gekennzeichnet.
3.1.2 Tiergruppen
Von den abgesetzten weiblichen Lämmern wurden 92 nach Wiegung auf einer
Digitalwaage (Koewa, Thiersheim) in zwei Gruppen eingeteilt-eine Versuchs- und
eine Kontrollgruppe. Hierbei wurde darauf geachtet, dass jedem Lamm der
Versuchsgruppe je ein Tier mit etwa gleichem Gewicht (±1 kg) in der Kontrollgruppe
zugeordnet wurde.
Entsprechend wurde mit 90 männlichen Lämmern verfahren.
Es wurden also vier Gruppen gebildet, je eine weibliche und männliche
Versuchsgruppe und je eine weibliche und männliche Kontrollgruppe.
Material und Methoden
33
In den Versuchsgruppen wurde entsprechend dem Prinzip des Targeted selective
treatment behandelt, in den Kontrollgruppen wurden alle Tiere entwurmt. Das
genaue Vorgehen hierbei wird in Kapitel 3.2.4.1. für die Versuchsgruppen und in
Kapitel 3.2.4.2. für die Kontrollgruppen beschrieben.
Zusätzlichen dienten zwei Tiere pro Geschlecht als Sentineltiere und blieben
zunächst aufgestallt. Das weitere Vorgehen mit diesen Tieren wird in Kapitel 3.2.6.
beschrieben.
Tabelle 1 zeigt eine Übersicht über die Versuchsgruppen.
Tabelle 1: Versuchsgruppen
Gruppen Nummer Beschreibung
I (TST ♀) TST-Gruppe weiblich
II (Total ♀) Kontrollgruppe weiblich
III (TST ♂) TST-Gruppe männlich
IV (Total ♂) Kontrollgruppe männlich
3.1.3 Weideflächen
Anfang Mai 2012 wurden die Gruppen auf je eine Weideparzelle gleicher Größe (1
ha pro Gruppe) ausgetrieben. Die Weiden lagen direkt nebeneinander und wurden
durch Elektroknotengitter bzw. Drahtgitter voneinander abgetrennt.
Der Umtrieb auf frische Weideflächen gleicher Größe erfolgte nach Bedarf.
Wenn Weideflächen wiederholt belegt werden mussten, wurde darauf geachtet, dass
dies durch immer dieselbe Lämmergruppe erfolgte.
Material und Methoden
34
3.2 Versuchsdurchführung
Zunächst soll Tabelle 2 einen zeitlichen Überblick über die durchgeführten
Maßnahmen geben. Eine genauere Beschreibung der einzelnen Maßnahmen erfolgt
dann in den nachfolgenden Kapiteln.
Tabelle 2: Zeitliche Übersicht über die durchgeführten Maßnahmen
Zeitpunkt Datum Maßnahme
t1 02.05. (♀)
07.05. (♂)
Weideaustrieb
t2 15.05. Wiegen aller Tiere
t3 29.05. Wiegen aller Tiere,
Kotprobenentnahme und -untersuchung Gr. I (TST♀) & II
(Total♀),
Behandlung Gr. II (Total♀) (entspr. Versuchsplan)
t4 12.06. Wiegen aller Tiere,
Kotprobenentnahme und -untersuchung Gr. III (TST♂) &
IV (Total♂),
Behandlung Gr. IV (Total♂) (entspr. Versuchsplan)
t5 26.06. Wiegen aller Tiere,
Kotprobenentnahme und -untersuchung und Behandlung
Gr. I (TST♀) & II (Total♀) (entspr. Versuchsplan)
02.07. Sentineltiere ♀ in Gruppe I (TST♀)
t6 10.07. Wiegen aller Tiere,
Kotprobenentnahme und -untersuchung und Behandlung
Gr. III (TST♂) & IV (Total♂) (entspr. Versuchsplan)
Material und Methoden
35
23.07. Aufstallung der Sentineltiere ♀
t7 24.07. Wiegen aller Tiere,
Kotprobenentnahme und -untersuchung und Behandlung
Gr. I (TST♀) & II (Total♀) (entspr. Versuchsplan)
30.07. Schlachtung der Sentineltiere ♀,
parasitologische Sektion der Magen-Darm-Trakte
03.08. Sentineltiere ♂ in Gruppe III (TST♂)
t8 07.08. Wiegen aller Tiere,
Kotprobenentnahme und -untersuchung und Behandlung
Gr. III (TST♂) & IV (Total♂) (entspr. Versuchsplan)
13.08. Schlachtung von je 10 Tieren aus Gruppe III (TST♂) & IV
(Total♂),
parasitologische Sektion der Magen-Darm-Trakte
t9 22.08. Wiegen aller Tiere,
Kotprobenentnahme und -untersuchung und Behandlung
Gr. I (TST♀) & II (Total♀) (entspr. Versuchsplan)
24.08. Aufstallung der Sentineltiere ♂
31.08. Schlachtung der Sentineltiere ♂,
parasitologische Sektion der Magen-Darm-Trakte
t10 04.09. (♂)
06.09. (♀)
Kotprobenentnahme und -untersuchung aller Tiere,
Behandlung aller Tiere aus Gruppe I (TST♀), II (Total♀) &
III (TST♂) mit 40 mg/kg Fenbendazol,
Behandlung der Hälfte der Tiere aus Gruppe IV (Total♂)
mit den schlechteren FAMACHA-Werten mit 40 mg/kg, der
anderen Hälfte mit 5 mg/kg Fenbendazol
10.09. Schlachtung von je 5 Tieren aus Gruppe III (TST♂) & IV
(Total♂),
parasitologische Sektion der Magen-Darm-Trakte
t11 11.09. Kotprobenentnahme und -untersuchung Gr. III (TST♂) &
IV (Total♂)
Material und Methoden
36
18.09. Wiegen aller Tiere, Kotprobenentnahme und -
untersuchung Gr. I (TST♀) & II (Total♀), Behandlung von
Gr. III (TST♂) und IV (Total♂) mit Levamisol (8 mg/kg)
21.09. Aufstallung Gr. III (TST♂) und IV (Total♂)
t12 25.09. Kotprobenentnahme und -untersuchung Gr. III (TST♂) &IV
(Total♂)
02.10. Wiegen, Kotprobenentnahme und -untersuchung und
Behandlung Gr. I (TST♀) & II (Total♀) (entspr.
Versuchsplan)
t13 09.10. Kotprobenentnahme und -untersuchung Gr. I (TST♀) & II
(Total♀)
15.10. Schlachtung von je 5 Tieren aus Gruppe I (TST♀) & II
(Total♀),
parasitologische Sektion der Magen-Darm-Trakte
18.10. Behandlung von Gr. I (TST♀) & II (Total♀) mit Levamisol
(8mg/kg),
Aufstallung von Gr. I (TST♀) & II (Total♀)
3.2.1 Wiegungen
Alle Tiere wurden alle zwei Wochen, beginnend beim Weideaustrieb, gewogen.
Hierbei wurden die Tiere einzeln durch einen Treibgang auf die Waage getrieben.
Hier wurden die Ohrmarken der Tiere mit einem Scanner (Agrident GmbH,
Barsinghausen) eingelesen und das von der Waage abgelesene Gewicht manuell in
das Gerät eingegeben. Später konnten die Daten mittels Datenkabel auf einen PC in
ein gängiges Tabellenkalkulationsprogramm (Open Office) übertragen werden.
Aus den Gewichten konnten am PC die Tageszunahmen im zwei-beziehungsweise
vierwöchigen Intervall berechnet werden.
Material und Methoden
37
3.2.2 Kotprobenentnahme
Alle vier Wochen wurden Einzeltierkotproben gesammelt. Hierbei wurde jedem Tier
rektal mittels Einmalhandschuhen frischer Kot entnommen. Die Proben wurden so
gekennzeichnet, dass sie dem jeweiligen Tier zuzuordnen waren.
Die Kotproben wurden anschließend mit dem in Kapitel 3.2.2.1 näher beschriebenen
McMaster-Verfahren untersucht.
Die weiblichen und männlichen Tiere wurden abwechselnd im 2-Wochen-Abstand
versetzt, beprobt.
3.2.2.1 McMaster-Verfahren
Die Einzeltierkotproben wurden nach der Entnahme mit dem modifizierten McMaster-
Verfahren (SCHNIEDER, 2006) untersucht um die Eizahl pro Gramm Kot (EpG) zu
ermitteln.
Hierbei wurden vier Gramm Kot in einem Mörser mittels digitaler Waage (Kern,
Balingen) abgewogen. Nach Zugabe von gesättigter Natriumchlorid (NaCl)-Lösung
wurde der Kot zu einer homogenen Suspension verrührt. Diese Suspension wurde
anschließend mit gesättigter NaCl-Lösung durch ein Sieb (Roth, Karlsruhe) in einen
Standzylinder (Brand, Wertheim) gespült, sodass man im Zylinder ein
Gesamtvolumen von 60 ml erhielt. Nach Umfüllen in ein Becherglas (Glaswerk
Wertheim) wurde die Flüssigkeit mittels Pasteur-Pipette (Roth, Karlsruhe) gut
resuspendiert und luftblasenfrei in eine McMaster-Kammer aus Kunststoff mit zwei
Zählfeldern (FiBL, Zürich) gefüllt.
Nach fünfminütiger Flotation wurden beide Felder der Kammer unter dem Mikroskop
(Leica, Wetzlar) bei 100-facher Vergrößerung durchgemustert und alle Eier von
Magen-Darm-Strongyliden, Strongyloides, Moniezia, Nematodirus, Trichuris und
Oozyten von Eimeria unter Zuhilfenahme eines Zählgerätes (Jürgens, Bremen; CAT,
Staufen) gezählt.
Die Ei-bzw. Oozystenzahl pro Gramm Kot wurde mit folgender Formel errechnet:
Material und Methoden
38
EpG/ OpG = (Summe der Eizahlen aus beiden Zählfeldern) x 50
3.2.2.2 Eizahlreduktionstest (EZRT)
Da sich im Laufe des Versuches Hinweise auf eine Anthelmintikaresistenz ergaben,
wurden im September und Oktober Eizahlreduktionstests durchgeführt. Hierzu
wurden am Tag der Behandlung, sowie drei bis sieben Tage nach
Levamisolbehandlung, bzw. acht bis zehn Tage nach Benzimidazolbehandlung
Einzeltierkotproben entnommen, die jeweils unmittelbar nach der Entnahme mit dem
McMaster-Verfahren untersucht wurden (COLES et al., 2006). Die Anzahl der jeweils
zu den EZRT herangezogenen Tiere ist Tabelle 3 zu entnehmen.
Anfang Oktober wurde die Eizahlreduktion bei allen Gruppen nach Fenbendazol-
Behandlung ermittelt; Mitte Oktober bei den männlichen Tieren nach Levamisol-
Behandlung. Anfang September wurde bei den weiblichen Tieren nach Gabe der
erhöhten Fenbendazoldosis und ebenfalls Mitte September nach
Levamisolbehandlung erneut ein EZRT durchgeführt.
Die Eizahlreduktion wurde mit dem Excel-Programm Reso für Excel, Version FECRT
v4.0 des AusVet Animal Health Services for the University of Sydney, ermittelt
(AUSTRALIAN WOOL INNOVATION & UNIVERSITY OF SYDNEY, 2003).
Material und Methoden
39
Tabelle 3: Anzahl der zum Eizahlreduktionstest herangezogenen Lämmer
Gruppe Zeitraum Präparat/
Dosierung
MDS
n=
Strongyloides
n=
III (TST♂)
04.09.
11.09.
Fenbendazol
40 mg/kg
10 10
IV (Total♂)
04.09.
11.09.
Fenbendazol
5 mg/kg
11 11
Fenbendazol
40 mg/kg
9 9
I (TST♀)
06.09.
18.09.
Fenbendazol
40 mg/kg
19 25
II (Total♀)
06.09.
18.09.
Fenbendazol
40 mg/kg
26 27
III (TST♂)
und
IV (Total♂)
11.09.
25.09.
Levamisol
8 mg/kg
20 25
I (TST♀)
behandelte
Tiere (TST)
02.10.
09.10.
Fenbendazol
5 mg/kg
(TST -> 25%
behandelt)
6 7
I (TST♀)
nicht
behandelte
Tiere
9 13
Material und Methoden
40
II (Total♀)
02.10.
09.10.
Fenbendazol
5 mg/kg
23 26
I (TST♀) 09.10.
25.10.
Levamisol
8 mg/kg
(18.10.)
15 19
II (Total♀) 09.10.
25.10.
Levamisol
8 mg/kg
(18.10.)
19 24
n= Anzahl der Tiere, die für die Beprobung heran gezogen wurden
3.2.3 Scores
Zum Zeitpunkt der Kotprobenentnahme wurden bei jedem Tier der Body Condition
Score, der FAMACHA©-Score sowie der Dag-Score ermittelt.
3.2.3.1 Body-Condition-Score
Beim Body Condition Score (THOMPSON u. MEYER, 1984) wird der
Ernährungszustand der Schafe beurteilt. Dies geschieht indem man die Fett- und
Muskelabdeckung der Dorn- und Querfortsätze der Lendenwirbelsäule palpiert und
nach einer Skala von 1 bis 5 im 0,5 Punkte-Intervall einordnet.
Material und Methoden
41
Tabelle 4: Klinische Ausprägung der fünf Stufen des Body condition score (nach
THOMPSON u. MEYER, 1984)
Stufe Klinik
1
(abgemagert)
Dornfortsätze scharf und prominent, Musculus (M.) longissimus
dorsi flach, ohne Fettabdeckung, Querfortsätze scharf, Finger
können unter ihre Enden geschoben werden, Zwischenräume der
Fortsätze palpierbar
2
(dünn)
Dornfortsätze scharf und prominent, M. longissimus dorsi voll
aber mit wenig Fettabdeckung, Querfortsätze weich, schwach
abgerundet, Finger können mit leichtem Druck unter ihre Enden
geschoben werden
3
(durchschnittlich)
Dornfortsätze weich und abgerundet, einzelne Fortsätze nur mit
Druck fühlbar, Querfortsätze weich und gut abgedeckt, mit festem
Druck unter die Enden fassbar, M. longissimus dorsi voll mit
moderater Fettabdeckung
4
(fett)
Dornfortsätze nur mit Druck als harte Linie fühlbar, Querfortsätze
nicht fühlbar, M. longissimus dorsi voll mit dicker Fettabdeckung
5
(adipös)
Dornfortsätze nicht palpierbar, dort wo normalerweise die
Dornfortsätze zu fühlen sind ist eine Furche im Fettgewebe,
Querfortsätze nicht palpierbar, M. longissimus dorsi sehr voll mit
sehr dicker Fettabdeckung
3.2.3.2 FAMACHA©-Score
Der FAMACHA©-Score dient zur Bestimmung des Grades der Anämie eines Tieres.
Dies erfolgt durch die Beurteilung der Färbung der Konjunktiven und Einordnung des
Befundes auf einer Skala von 1 bis 5.
Klinisch stellen sich die einzelnen Skalenpunkte wie folgt dar:
Material und Methoden
42
1= rot, nicht anämisch; 2= rosa-rot, nicht anämisch; 3= rosa, geringgradig anämisch;
4= blass-rosa, anämisch; 5= weiß, porzellanfarben, hochgradig anämisch.
Der FAMACHA©-Score hat nur Aussagekraft für den Befall mit hämatophagen
Endoparasiten. Beim Schaf ist dies Haemonchus contortus.
3.2.3.3 Dag-Score
Anhand des Dag-Score erfolgt eine Beurteilung der Wolleverschmutzung in der
Analregion, um (parasitär bedingte) Diarrhoe zu detektieren. Die Skala reicht von 0
(keine Verschmutzung) bis 5 (hochgradige Verschmutzung).
Abbildung 1: Dag-Score (YOUNG, 2006)
Material und Methoden
43
3.2.4 Anthelmintische Behandlungen
3.2.4.1 Versuchsgruppen
An den Versuchsgruppen (je eine weibliche (Gruppe I= TST♀) und eine männliche
(Gruppe III=TST♂) Gruppe) wurde das Targeted Selective Treatment durchgeführt.
Hierbei wurden nur die 25% der Tiere der Gruppe entwurmt, die im Vergleich zur
Wiegung vier Wochen vorher die geringsten täglichen Zunahmen aufwiesen.
Die erste anthelmintische Behandlung erfolgte acht Wochen nach Weideaustrieb,
danach alle vier Wochen.
Die Tiere wurden mit Fenbendazol (Panacur®-Suspension 2,5% für Schafe) in der
Dosierung 5 mg/kg entsprechend ihres Körpergewichtes, welches bei der Wiegung
am gleichen Tag ermittelt wurde, behandelt.
Aufgrund deutlicher Hinweise auf das Vorliegen einer Anthelmintikaresistenz gegen
Benzimidazole wurden Anfang September die beiden TST-Gruppen, auf mündliche
Empfehlung von Prof. Dr. Janina Demeler des Instituts für Parasitologie der FU
Berlin, einmalig mit Fenbendazol in der Dosierung 40 mg/kg Körpergewicht
behandelt.
Da auch die erhöhte Fenbendazol-Dosis vor allem bei der männlichen Gruppe
(Gruppe III (TST♂)) nicht ausreichend zur klinischen Besserung führte, wurden die
Tiere Ende September mit Levamisol (Ripercol®-Drench 88,5 mg/ml) in der
Dosierung 8 mg/kg ensprechend ihres Körpergewichtes (KGW) behandelt und
aufgestallt.
Die weibliche Gruppe (Gruppe I (TST♀)) verblieb zunächst noch auf der Weide und
wurde zur Aufstallung Mitte Oktober mit der entsprechenden Levamisol-Dosis
behandelt.
3.2.4.2 Kontrollgruppen
In den Kontrollgruppen (je eine weibliche (Gruppe II = Total ♀) und eine männliche
(Gruppe IV= Total ♂) Gruppe) wurden alle Tiere der Gruppe alle vier Wochen mit
Material und Methoden
44
Fenbendazol (Panacur®-Suspension 2,5% für Schafe) in der Dosierung 5 mg/kg
entsprechend ihres Körpergewichtes behandelt.
Die erste Behandlung erfolgte vier Wochen nach Weideaustrieb, danach ebenfalls
alle vier Wochen.
Auch die Kontrollgruppen wurden Anfang September wegen des
Resistenzverdachtes mit 40 mg Fenbendazo/kg KGW behandelt. Lediglich die Hälfte
der männlichen Kontrollgruppe (Gruppe IV = Total ♂) mit den besseren FAMACHA-
Werten wurde mit der üblichen Dosis von 5 mg Fenbendazol /kg KGW behandelt, um
die Resistenz durch eine Kontrollkotprobe mittels Eizahlreduktionstest nachweisen
zu können.
Die beiden Kontrollgruppen wurden ebenfalls zur Aufstallung (Ende September bei
der männlichen Gruppe IV (Total♂) bzw. Mitte Oktober bei der weiblichen Gruppe II
(Total♀)) mit Levamisol in der Dosierung 8 mg/kg behandelt.
3.2.5 Schlachtungen
Der anfängliche Versuchsplan sah vor, dass der Schäfer gegen Ende Oktober etwa
50 weibliche Tiere auswählen würde, die zur Nachzucht im Bestand verbleiben
sollten. Für die restlichen weiblichen sowie alle männlichen Tiere war vorgesehen,
sie Ende Oktober zu schlachten, die Magen-Darm-Trakte zu entnehmen und gemäß
der Beschreibung in Kapitel 3.2.7 parasitologisch zu untersuchen.
Da allerdings bereits im August einige männliche Tiere das Schlachtgewicht von 45
kg erreicht hatten, wurden bereits Mitte August je zehn Tiere aus Gruppe III (TST♂)
und IV (Total♂) geschlachtet und die Darmkonvolute parasitologisch untersucht.
Vier Wochen später sollten weitere 10 Tiere je aus Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂)
geschlachtet werden. Da aber aufgrund einer Haemonchose und Strongyloidose die
Zunahmen weit hinter den Erwartungen zurück lagen, konnten Anfang bis Mitte
September aus Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) jeweils nur fünf Tiere mit
entsprechendem Schlachtgewicht geschlachtet werden.
Material und Methoden
45
Durch das Anhalten der Erkrankung und die in Kapitel 3.2.4 bereits erwähnte
Anthelmintikaresistenz wurden die deutlich stärker betroffenen männlichen Tiere
Mitte September aus dem Versuch genommen, aufgestallt und mit 8 mg
Levamisol/kg KGW (Ripercol ® Drench 88,5 mg/ml) per os behandelt.
3.2.6 Sentineltiere
Je zwei weibliche (S♀1, S♀2) und männliche Lämmer (S♂1, S♂2) wurden nicht mit
den anderen Tieren bei Versuchsbeginn auf die Weide ausgetrieben, sondern
verblieben zunächst im Stall.
Anfang Juli wurden die beiden weiblichen Tiere zur weiblichen TST-Gruppe auf die
Weide ausgetrieben und verblieben für drei Wochen in der Gruppe. Anschließend
wurden sie für eine Woche aufgestallt bevor sie geschlachtet wurden. Nach der
Schlachtung wurden die Magen-Darm-Konvolute beider Tiere entnommen und
entsprechend der Beschreibung in Kapitel 3.2.7 parasitologisch untersucht.
Entsprechend wurden die männlichen Sentineltiere Anfang August für drei Wochen
zur männlichen Kontrollgruppe ausgetrieben und nach einer Woche im Stall
geschlachtet. Bei diesen Tieren wurden ebenfalls die Magen-Darm-Konvolute
entnommen und parasitologisch untersucht.
3.2.7 Parasitologische Untersuchung der Magen-Darm-Konvolute postmortal
Die parasitologischen Sektionen wurden nach der Methodik von WOOD et al. (1995)
durchgeführt.
Alle der nachfolgend beschriebenen Schritte erfolgten für jeden entnommenen
Magen-Darm-Trakt einzeln. Jede Probe blieb stets dem Tier, dem sie entstammte,
zuzuordnen.
Material und Methoden
46
3.2.7.1 Auswaschen des Magen-Darm-Trakts
Bei den nach der Schlachtung entnommenen Darmkonvoluten wurden zunächst
Doppelligaturen an folgenden Stellen gesetzt:
Übergang vom Blätter-zum Labmagen (Ostium omasoabomasicum)
Übergang vom Labmagen zum Duodenum (Pylorus)
Übergang vom Ileum zum Zäkum (Ostium ileocaecale)
Anschließend wurden die Segmente jeweils zwischen den beiden Ligaturen getrennt
und vom Gekröse abgelöst.
Daraufhin wurde der Labmagen der Länge nach über einem Eimer aufgeschnitten,
der Inhalt im Eimer aufgefangen und die Schleimhaut unter einem zarten
Wasserstrahl leicht abgerieben, wobei diese Flüssigkeit ebenfalls aufgefangen
wurde. Um eine definierte Menge ausgespülten Materials zu erhalten, wurde das
Volumen auf vier Liter aufgefüllt.
Das ausgespülte Material wurde gründlich durchgerührt, daraus wurden zwei
Aliquots mit je fünf Prozent des Gesamtvolumens entnommen (200 ml bei vier Litern
Gesamtvolumen). Eines der Aliquots dient der weiteren Untersuchung, das andere
zur Reserve.
Zur Fixierung der Nematoden im ausgewaschenen Material wurde zu den Aliquots
zehnprozentige Formalinlösung im Verhältnis 1:1 bis 2:1 hinzu gegeben, um eine
etwa drei-bis fünfprozentige Endkonzentration zu erreichen.
In entsprechender Weise wurde mit Dünn- und Dickdarm verfahren.
Um eventuell vorhandene Schleimhautstadien von Teladorsagia mit zu erfassen,
wurde der Labmagen mit der von WOOD et al. (1995) beschriebenen
Inkubationsmethode weiter behandelt:
Der ausgewaschene Labmagen wurde hierbei mit der Schleimhautseite nach unten
auf ein rundes Kunststoffgitter gelegt. Dieses wurde mit Metallhaken in einen
Kunststoffeimer gehängt. In den Eimer wurde angewärmte physiologische
Material und Methoden
47
Kochsalzlösung (0,9%ig) gegeben bis die Schleimhaut des Labmagens ausreichend
Kontakt zur Lösung hatte. In dieser Form wurde der Labmagen bei 37°C für etwa
zwölf Stunden inkubiert.
Nach der Inkubation wurde die Flüssigkeit durch ein 36µm-Sieb (Retsch, Haan)
gegeben und der Siebrückstand vorsichtig mit etwas Leitungswasser in einen
Kunststoffbecher gespült. Auch hier wurde zehnprozentige Formalinlösung in oben
beschriebener Weise hinzu gegeben.
3.2.7.2 Selektion der Magen-Darm-Nematoden aus den Aliquots
Um eine Differenzierung der Magen-Darm-Nematoden vornehmen zu können,
mussten die Parasiten aus den entnommenen Aliquots heraus selektiert werden.
Dazu wurde die zu bearbeitende Probe zunächst in ein Feinsieb mit 50 µm
Maschenweite (Retsch, Haan), bzw. 36 µm bei den Proben der inkubierten
Labmägen, gegeben und mit einem Wasserstrahl durchgewaschen, um das Formalin
so gut wie möglich aus der Probe zu entfernen. Anschließend wurde der
Siebrückstand mit Leitungswasser zurück in das Probengefäß gespült. Dieses
Material wurde portionsweise in eine Petrischale überführt und unter einer
Stereolupe bei zehnfacher Vergrößerung durchgemustert. Sämtliche im Blickfeld
erscheinende Nematoden wurden bei diesem Vorgehen mit einem feinen Haken
bzw. einer feinen Pinzette heraus selektiert und in ein Falconröhrchen (Roth,
Karlsruhe) mit etwas Leitungswasser überführt.
Zu den selektierten Magen-Darm-Nematoden in den Falconröhrchen wurde erneut
zehnprozentige Formalin-Lösung im Verhältnis 1:1 bis 1:3 hinzu gegeben, um die
Parasiten zu fixieren.
Material und Methoden
48
3.2.7.3 Differenzierung der Magen-Darm-Nematoden
Um die Parasiten zu differenzieren wurden sie in nachfolgend beschriebener Weise
vorbereitet. Auch hierbei wurden die Proben wieder getrennt nach Labmagen,
Dünndarm und Dickdarm behandelt.
Der Inhalt des Falconröhrchens wurde in eine Petrischale gegeben, anschließend
wurde das Röhrchen mit etwas Leitungswasser ausgespült und die Spülflüssigkeit
ebenfalls in die Petrischale gegeben.
Ein Objektträger wurde am Rand auf dem entsprechend dafür vorgesehenen Bereich
mit der Ohrmarkennummer des entsprechenden Tieres und des Darmabschnittes
beschriftet. Auf den restlichen Bereich des Objektträgers wurde mit einer Pasteur-
Pipette (Roth, Karlsruhe) etwas Polyvinyl-Lactophenol (Waldeck, Münster) gegeben.
Um die Parasiten besser sehen zu können wurde die Petrischale auf eine dunkle
Unterlage gestellt. Aus der Petrischale wurden nun mit einem feinen Häkchen bzw.
einer feinen Pinzette zunächst alle makroskopisch erkennbaren Nematoden heraus
genommen und in das Polyvinyl-Lactophenol auf dem Objektträger verbracht und
möglichst nebeneinander platziert. Reichte der Platz auf dem Objektträger nicht für
alle Parasiten der Probe aus, wurden mehrere in oben beschriebener Weise
präparierte Objektträger verwendet. Waren in der Petrischale makroskopisch keine
Parasiten mehr erkennbar wurde der restliche Inhalt unter der Stereolupe kontrolliert
und eventuell vorher übersehene Exemplare noch auf den Objektträger verbracht.
Anschließend wurden die Nematoden auf dem Objektträger mit einem Deckglas
abgedeckt und zum Trocknen für mindestens 48 Stunden beiseite gelegt.
Alle eben genannten Schritte wurden aufgrund des Formalins in den Proben und des
Polyvinyl-Lactophenols unter einem Abzug durchgeführt.
Nach Aushärtung der Proben auf den Objektträgern wurden die Parasiten unter dem
Mikroskop (Leica, Wetzlar) bei 40-bis 400-facher Vergrößerung nach Art differenziert.
Material und Methoden
49
Hierzu wurden die männlichen Parasiten anhand der Morphologie der Mundkapsel
und der Bursa copulatrix mit den Spikula entsprechend ihrer Art zugeordnet und die
Anzahl erfasst.
Da bei Strongyloides nur die weiblichen Tiere parasitisch im Wirt leben, wurden hier
demzufolge nicht die männlichen, sondern nur die weiblichen Parasiten gezählt.
Bei den Nematoden des Dickdarms wurden männliche und weibliche Tiere zur
Differenzierung heran gezogen. Bei den Gattungen Trichuris, Chabertia und
Oesophagostomum sind die Körperform bzw. die Morphologie der Mundkapsel sehr
charakteristisch, sodass es keiner Hinzuziehung der Merkmale der männlichen
Geschlechtsorgane bedurfte. Da bei den geschlachteten Tieren aus dem Versuch
ohnehin nur sehr wenige Nematoden aus den Dickdärmen gewonnen werden
konnten, konnte die Zahl durch Einbeziehung der weiblichen Nematoden etwas
erhöht werden.
Die morphologischen Merkmale der Nematodenarten, die zur Differenzierung heran
gezogen wurden, sind in Tabelle 5 dargestellt.
Tabelle 5: Morphologische Merkmale der Magen-Darm-Nematoden (nach
SCHNIEDER, 2006, S. 191-208, 233)
Gattung Lokalisation Merkmale
Teladorsagia/
Ostertagia
Labmagen Sehr kleine Mundkapsel
Spikula kurz und dick (O. ostertagi)
bzw. stabförmig (O. circumcincta)
Gubernaculum blattförmig
(O.ostertagi) bzw.
tennisschlägerförmig (O. circumcincta)
Größe 6 -12 mm
Material und Methoden
50
Haemonchus Labmagen Sehr kleine Mundkapsel (mit starkem
Zahn bei H. contortus)
Spikula kurz, schlank, mit Haken
besetzt
Gubernaculum kahnförmig
Größe 18 -30 mm
Trichostrongylus Labmagen,
Dünndarm
Keine Mundkapsel
sich verjüngendes Vorderende
Spikula kurz und dick, ungleich lang
bei T. axei und T. columbriformis,
kaudal spitz zulaufend
Gubernaculum spindelförmig
Größe 3 -8 mm
Strongyloides Dünndarm Größe 3,5 -6 mm
Uterus und Darm verzwirnt
Hinterende kegelförmig, Spitze leicht
abgerundet
Nematodirus Dünndarm Keine Mundkapsel
Länglich-flaschenförmige
Kutikulaauftreibung am Vorderende,
Querrillen
Spikula lang, Enden verschmolzen,
von Membran umhüllt (herzförmig bei
N. battus, lanzettförmig bei N. filicollis,
löffelförmig bei N. spathiger)
Größe 8 -26 mm
Material und Methoden
51
Cooperia Dünndarm Keine Mundkapsel
Kugelförmig erweitertes Vorderende
„Streifung“ der Kutikula
Spikula kurz und dick, leicht
geschwungen
Kein Gubernaculum
Größe 5 -9 mm
Bunostomum Dünndarm Große, trichterförmige Mundkapsel,
zwei Schneidplatten
Spikula lang, fadenförmig
Größe 10 -28 mm
Dorsal aufgebogenes Vorderende
(„Hakenwurm“)
Chabertia Dickdarm Große, kugelige Mundkapsel
Mundöffnung mit zwei Blätterkränzen
Spikula lang, fadenförmig
Größe 11 -20 mm
Oesophagostomum Dickdarm Kurze, breite Mundkapsel
Mundöffnung mit Blätterkranz
Blasenförmige Kutikulaauftreibungen
am Vorderende mit Einschnürungen
Spikula lang
Größe 14 -22 mm
Trichuris Dickdarm Langer, haardünner Vorderkörper
(etwa zwei Drittel der Gesamtlänge),
kurzer, dicker Hinterkörper
(„Peitschenwurm“)
Größe 38 -80 mm
Material und Methoden
52
3.3 Statistik
Die Werte der täglichen Zunahmen, Gewichte, MDS- und Strongyloides-EpG wurden
mittels Histogramm mit SAS v9.1 (SAS Institute Inc. USA) auf Normalverteilung
geprüft. Bei allen Parametern sind die Werte überwiegend normal verteilt.
Die Vergleiche der MDS- und Strongyloides-EpG, der Gewichte sowie der täglichen
Zunahmen zwischen Versuchs- und Kontrollgruppen erfolgte durch den Fisher‘s
LSD-Test (eine zweifaktorielle Varianzanalyse mit t-Test). Dieser wurde mit SAS v
9.1 durchgeführt. Eine Signifikanz besteht bei einem p-Wert < 0,05.
Der Gruppenvergleich der qualitativen Parameter Body Condition Score, Dag-Score
und FAMACHA-Score erfolgte mittels Chi²- und Fisher’s Exact Test.
Die arithmetischen Mittelwerte der Daten wurden mit SAS und Excel 2010 ermittelt,
die Verlaufsgrafiken wurden mit Excel 2010 erstellt.
Die Korrelationen wurden anhand des Korrelationskoeffizienten, dem p-Wert und
dem Bestimmtheitsmaß bewertet. Diese Parameter wurden mit SAS (v 9.3) mittels
Rang-Korrelationskoeffizienten nach Spearman und grafisch mit Excel ermittelt. Auch
hierbei wurde die Signifikanzgrenze bei p < 0,05 festgelegt.
Zur Analyse der Daten der Nematodendifferenzierung wurden mithilfe von Excel
2010 die prozentualen Anteile der Nematodengattungen, deren Mittelwerte, Minima,
Maxima, Medianwerte, 25- und 75%-Quartile und Standardabweichungen errechnet
und aus diesen Werten Boxplots erstellt.
Ergebnisse
53
4 Ergebnisse
4.1 Magen-Darm-Strongyliden-Eizahlen
4.1.1 Verlauf
Ausgewertet wurde der Verlauf der MDS-EpG getrennt nach Gruppe über den
Untersuchungszeitraum von Mai bis September bei den männlichen bzw. bis Oktober
bei den weiblichen Tieren.
Bis t7 (24.07.) bewegten sich bei allen Gruppen die Eizahlen mit durchschnittlichen
Werten von unter 500 Eiern pro Gramm Kot (arithmetisches Mittel) auf einem
niedrigen Niveau.
Ab t7 kam es zu einem Anstieg der EpG, vor allem bei Gruppe III (TST♂), ab t9
(21.08.) auch bei Gruppe IV (Total♂). Bei t10 (04.09.) wurde ein deutliches Maximum
der EpG von durchschnittlich 2928 (±1925) bei Gruppe III (TST♂) und 2031 (±2210)
bei Gruppe IV (Total♂) erreicht. In Gruppe I (TST♀) und II (Total♀) fiel dieses
Maximum mit 689 (±460) bzw. 1382 (±1052) Eiern pro Gramm im Durchschnitt
deutlich niedriger aus.
Nach der Fenbendazolbehandlung der Tiere zum Zeitpunkt t10 mit 40 mg/kg kam es
zu einem moderaten Rückgang der Eizahlen. Erst nach Levamisolbehandlung von
Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) konnte in diesen Gruppen die EpG deutlich auf 5
(±22) bzw. 23 (±51) gesenkt werden.
Die durchschnittlichen EpGs der einzelnen Gruppen und Zeitpunkte sind in Tabelle 6
aufgeführt. Abbildung 2 gibt einen grafischen Überblick über den Verlauf der
Eizahlen.
Ergebnisse
54
Tabelle 6: Durchschnittliche MDS-EpG (arithmetische Mittel)
Gruppe
Zeitpunkte
I (TST ♀)
MW (SD)
II (Total ♀)
MW (SD)
III (TST ♂)
MW (SD)
IV (Total ♂)
MW (SD)
t3
29.05.
91 (±83)
(n= 40)
79 (±76)
(n= 42)
t4
12.06.
199 (±137)
(n= 43)
245 (±176)
(n= 43)
t5
26.06.
169 (±110)
(n= 46)
33 (±40)
(n= 45)
t6
10.07.
256 (±189)
(n= 43)
95 (±159)
(n= 45)
t7
24.07.
242 (±174)
(n= 42)
50 (±51)
(n= 41)
t8
07.08.
617 (±561)
(n= 38)
218 (±307)
(n= 41)
t9
21.08.
521 (±444)
(n= 37)
765 (±675)
(n= 40)
t10
04.09.
689 (±460)
(n= 35)
1382 (±1052)
(n= 34)
2928 (±1925)
(n= 25)
2031 (±2211)
(n= 24)
t11
19.09.
205 (±156)
(n= 34)
662 (±727)
(n= 39)
745 (±539)
(n= 10)
1840 (±2809)
(n= 20)
t12
02.10.
284 (±299)
(n= 34)
776 (±835)
(n= 35)
5 (±22)
(n= 20)
23 (±51)
(n= 24)
MW= Mittelwert (arithmetisches Mittel), SD= Standardabweichung, n= Anzahl der
beprobten Tiere
(Die Tierzahlen variieren leicht, da zum Teil nicht von allen Tieren Kot gewonnen
werden konnte. Bei Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) fielen zudem nach und nach
verendete bzw. geschlachtete Tiere weg)
Ergebnisse
55
Abbildung 2: Grafische Darstellung des MDS-EpG-Verlaufes
4.1.2 Vergleich der MDS-Eizahlen zwischen den Gruppen
Sowohl bei den weiblichen als auch bei den männlichen Gruppen hatte die Art der
Behandlung (TST oder Behandlung aller Tiere) einen signifikanten Einfluss auf die
MDS-Eizahlen (weibliche Tiere: p=0,0168; männliche Tiere: p=0,0206.).
Bei den weiblichen Tieren wies zu Beginn der Beprobungen die TST-Gruppe höhere
MDS-Eizahlen auf. Signifikante Unterschiede konnten hier bei t5 (p<0,001) und t7
(p=0,0025) nachgewiesen werden. Ab t9 (21.08.) lag die durchschnittliche EpG der
TST-Gruppe unter der der Kontrollgruppe. Hier war der Unterschied bei t10
(p=0,0052), t11 (p=0,0027) und bei t12 (p=0,0038) signifikant.
Die MDS-EpGs der männlichen Gruppen lagen bei der ersten Beprobung (t4) etwa
auf dem gleichen Niveau. Danach schied die TST-Gruppe höhere MDS-Eizahlen
aus; bei t6 und t8 war dieser Unterschied signifikant (t6: p=0,0004; t8: p=0,0003). Ab
t11 lag die durchschnittliche EpG der TST-Gruppe unter der der Kontrollgruppe.
Ergebnisse
56
4.2 Strongyloides-Eizahlen
4.2.1 Verlauf
Ähnlich der MDS-EpG bewegte sich die Strongyloides-EpG zu Beginn bis t6 auf
einem niedrigen Niveau von unter 500 Eiern pro Gramm Kot. Ab t7 stieg die Eizahl,
vor allem bei den männlichen Gruppen, stark an und erreichte bei Gruppe III (TST♂)
das Maximum bei t10 mit durchschnittlich 8066 (±7338) Eiern pro Gramm Kot. Bei
Gruppe IV (Total♂) lag das EpG-Maximum an t11 bei durchschnittlich 4313 (±3797)
Eiern pro Gramm Kot. Bei Gruppe I (TST♀) und II (Total♀) waren die maximalen
EpG Werte verglichen mit den männlichen Gruppen, mit 2046 (±2044) bzw 3785
(±3061) Eiern jeweils bei t10 etwas niedriger.
Nach der Fenbendazolbehandlung in 8-facher Dosis an t10 ging die EpG zwar bei
den Gruppen I (TST♀), II (Total♀) und III (TST♂) zurück, blieb aber mit
durchschnittlich 796 (±829) Eiern pro Gramm Kot in Gruppe I (TST♀), 1582 (±1223)
in Gruppe II (Total♀) und 4165 (±3366) in Gruppe III (TST♂) auf einem relativ hohen
Niveau. In der Folge kam es zudem bei den weiblichen Tieren in der Folge wieder zu
einem leichten Anstieg der EpG. In Gruppe IV (Total♂) konnte die 8-fache
Fenbendazol-Dosis die EpG nicht senken. Auch nach der Levamisolbehandlung
schieden die männlichen Tiere immer noch durchschnittlich über 2000 Eier pro
Gramm Kot aus.
Aus Tabelle 7 sind die durchschnittlichen EpG der einzelnen Gruppen und Zeitpunkte
ersichtlich, Abbildung 3 stellt den EpG-Verlauf grafisch dar.
Ergebnisse
57
Tabelle 7: Durchschnittliche Strongyloides-EpG
Gruppe
Zeitpunkte
I (TST ♀)
MW (SD)
II (Total ♀)
MW (SD)
III (TST ♂)
MW (SD)
IV (Total ♂)
MW (SD)
t3
29.05.
86 (±181)
(n= 40)
52 (±101)
(n= 42)
t4
12.06.
70 (±149)
(n= 43)
41 (±78)
(n= 43)
t5
26.06.
99 (±219)
(n= 46)
78 (±125)
(n= 45)
t6
10.07.
301 (±264)
(n= 43)
148 (±143)
(n= 45)
t7
24.07.
730 (±616)
(n= 42)
522 (± 520)
(n= 41)
t8
07.08.
3891 (±3721)
(n= 38)
1695 (±1320)
(n= 41)
t9
21.08.
1782 (±1481)
(n= 37)
1994 (±1866)
(n= 40)
t10
04.09.
2046 (±2044)
(n= 35)
3785 (±3061)
(n= 34)
8066 (±7338)
(n= 25)
3619 (±3514)
(n= 24)
t11
19.09.
796 (±829)
(n= 34)
1582 (±1223)
(n= 39)
4165 (±3366)
(n= 10)
4313 (±3797)
(n= 20)
t12
02.10.
1003 (±961)
(n= 34)
1878 (±2180)
(n= 35)
2483 (±3526)
(n= 20)
3046 (±5080)
(n= 24)
MW= Mittelwert (arithmetisches Mittel), SD= Standardabweichung, n= Anzahl der
beprobten Tiere
(Die Tierzahlen variieren leicht, da zum Teil nicht von allen Tieren Kot gewonnen
werden konnte. Bei Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) fielen zudem nach und nach
verendete bzw. geschlachtete Tiere weg)
Ergebnisse
58
Abbildung 3: Grafische Darstellung der Strongyloides-EpG-Verläufe
4.2.2 Vergleich der Strongyloides-Eizahlen zwischen den Gruppen
Bei den weiblichen Gruppen hat die Art der Behandung (TST oder Total) keinen
signifikanten Einfluss auf die Strongyloides-EpG. Bei den männlichen Gruppen
hingegen ist dies der Fall (p=0,0027)
Bei Betrachtung der einzelnen Zeitpunkte konnte bei den weiblichen Tieren lediglich
bei t7 ein signifikanter Unterschied in der Strongyloides-EpG zwischen den Gruppen
nachgewiesen werden (p=0,0165).
Bei den männlichen Gruppen war der Unterschied an zwei Zeitpunkten signifikant.
Zum einen an t8 (p=0,009), zum anderen an t10 (p=0,0156).
4.3 Gewichte
4.3.1 Verlauf
Bis t7 war bei allen Gruppen eine stetige Gewichtszunahme zu verzeichnen: Das
durchschnittliche Gewicht der männlichen Tiere lag bis zu diesem Zeitpunkt stets
Ergebnisse
59
über dem der weiblichen. Ab t7 kam es bei Gruppe III (TST♂) zu einer deutlichen
Gewichtsabnahme von durchschnittlich knapp 39 (±7) kg auf 35 (±7) kg bei t10,
danach wieder zu einer leichten Zunahme auf knapp 37 (±4) kg bei t11.
Das durchschnittliche Gewicht von Gruppe IV (Total♂) stagnierte nach anfänglichem
Anstieg von t7 bis t10 bei etwa 43 (±6) kg und fiel danach leicht auf 41(±5) kg ab.
Bei beiden weiblichen Gruppen stieg das Gewicht über den gesamten
Untersuchungszeitraum mehr oder weniger gleichmäßig an.
Die Mittelwerte der Gewichte sind in Tabelle 8 tabellarisch und deren Verlauf in
Abbildung 4 grafisch dargestellt.
Abbildung 4: Grafische Darstellung der Gewichtsverläufe
Ergebnisse
60
Tabelle 8: Mittelwerte der Gewichte (in kg)
Gruppe
Zeitpunkte
I (TST ♀)
MW (SD)
II (Total ♀)
MW (SD)
III (TST ♂)
MW (SD)
IV (Total ♂)
MW (SD)
t1
02.05./08.05.
28 (±5)
(n= 46)
29 (±5)
(n= 46)
30 (±6)
(n= 45)
30 (±6)
(n= 45)
t2
16.05.
29 (±5)
(n= 46)
29 (±4)
(n= 46)
31 (±6)
(n= 45)
31 (±6)
(n= 45)
t3
29.05.
32 (±5)
(n= 46)
32 (±4)
(n= 46)
33 (±6)
(n= 45)
34 (±6)
(n= 45)
t4
12.06.
34 (±5)
(n= 46)
34 (±5)
(n= 46)
35 (±6)
(n= 44)
36 (±6)
(n= 45)
t5
26.06.
36 (±5)
(n= 46)
37 (±5)
(n= 46)
38 (±7)
(n= 44)
40 (±6)
(n= 45)
t6
10.07.
37 (±5)
(n= 46)
38 (±5)
(n= 46)
39 (±6)
(n= 44)
42 (±6)
(n= 45)
t7
24.07.
39 (±6)
(n= 46)
39 (±5)
(n= 46)
38 (±7)
(n= 44)
43 (±6)
(n= 44)
t8
07.08.
39 (±5)
(n= 46)
41 (±5)
(n= 46)
36 (±6)
(n= 43)
43 (±6)
(n= 44)
t9
21.08.
39 (±6)
(n= 46)
41 (±6)
(n= 46)
34 (±6)
(n= 32)
43 (±5)
(n= 34)
t10
04.09.
41 (±6)
(n= 46)
42 (±7)
(n= 46)
35 (±7)
(n= 30)
43 (±6)
(n= 30)
t11
19.09.
44 (±7)
(n= 46)
44 (±7)
(n= 46)
37 (±4)
(n= 23)
41 (±5)
(n= 25)
t12
02.10.
43 (±7)
(n= 46)
42 (±7)
(n= 46)
MW= Mittelwert (arithmetisches Mittel), SD= Standardabweichung, n= Anzahl der
beprobten Tiere
(Die Tierzahlen in Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) verringerten sich durch
Schlachtung bzw. das Verenden einzelner Tiere)
Ergebnisse
61
4.3.2 Vergleich der Gewichte zwischen den Gruppen
Bei den weiblichen Gruppen war der Einfluss der Behandlungsart nicht signifikant.
Bis t4 waren das Gewicht beider Gruppen etwa gleich, danach lagen die Werte von
Gruppe II (Total♀) etwas über denen von Gruppe I (TST♀).
Bei den männlichen Gruppen hatte die Art der Behandlung einen signifikanten
(p=0,01079) Einfluss auf das Gewicht. Signifikante Unterschiede sah man ab t7
(p=0,001, danach p<0,0001), als das Durchschnittsgewicht der Tiere aus Gruppe III
(TST♂) einen deutlichen Einbruch aufwies.
4.4 Tägliche Zunahmen
4.4.1 Verlauf
Zu Beginn der Versuchsphase stiegen die täglichen Zunahmen aller Gruppen an,
wobei die männlichen Tiere deutlich höhere tägliche Zunahmen aufwiesen als die
weiblichen Tiere.
Bei den weiblichen Tieren zeigte sich ab t4 trotz Schwankungen eine insgesamt
fallende Tendenz. Beide Gruppen erreichten die höchsten täglichen Zunahmen bei t4
mit 209 (±39) g/d in Gruppe I (TST♀) und 184 (±45) g/d in Gruppe II (Total♀). Die
niedrigsten Werte wurden bei Gruppe I (TST♀) bei t9 mit 12 (±90) g/d und bei
Gruppe II (Total♀) bei t12 mit -11 (±62) g/d erreicht.
Bei Gruppe III (TST♂) sanken die täglichen Zunahmen ab t3 von 225 (±95) g/d
kontinuierlich ab und erreichten bei t8 ihren niedrigsten Wert mit -120 (±114) g/d.
Anschließend stiegen die täglichen Zunahmen wieder an auf zuletzt 128 (±55) g/d
bei t11.
Gruppe IV (Total♂) wies die höchsten täglichen Zunahmen an t3 und t5 mit etwa 220
(±83 bzw. ±55) g/d auf. Nach einem Tiefpunkt an t8 mit 34 (±63) g/d stiegen die
Zunahmen wieder leicht an, fielen dann aber gegen Ende des Versuches auf -53
(±79) g/d bei t11 ab.
Ergebnisse
62
Tabelle 9: Mittelwerte der täglichen Zunahmen (in Gramm pro Tag)
Gruppe
Zeitpunkte
I (TST ♀)
(g/d)
MW (SD)
II (Total ♀)
(g/d)
MW (SD)
III (TST ♂)
(g/d)
MW (SD)
IV (Total ♂)
(g/d)
MW (SD)
t2
16.05.
44 (±89)
(n= 46)
28 (±92)
(n= 46)
74 (±160)
(n= 45)
124 (±169)
(n= 45)
t3
29.05.
103 (±31)
(n= 46)
120 (±29)
(n= 46)
225 (±95)
(n= 45)
221 (±83)
(n= 45)
t4
12.06.
209 (±39)
(n= 46)
184 (±45)
(n= 46)
180 (±67)
(n= 44)
184 (±59)
(n= 45)
t5
26.06.
148 (±53)
(n= 46)
129 (±35)
(n= 46)
140 (±70)
(n= 44)
221 (±55)
(n= 45)
t6
10.07.
92 (±40)
(n= 46)
156 (±52)
(n= 46)
123 (±48)
(n= 44)
203 (±48)
(n= 45)
t7
24.07.
105 (±57)
(n= 46)
57 (±58)
(n= 46)
22 (±78)
(n= 44)
91 (±59)
(n= 44)
t8
07.08.
75 (±46)
(n= 46)
112 (±64)
(n= 46)
-120 (±114)
(n= 43)
34 (±63)
(n= 44)
t9
21.08.
12 (±90)
(n= 46)
64 (±77)
(n= 46)
-89 (±133)
(n= 32)
101 (±68)
(n= 34)
t10
04.09.
57 (±68)
(n= 46)
37 (±82)
(n= 46)
52 (±162)
(n= 30)
83 (±85)
(n= 30)
t11
19.09.
165 (±94)
(n= 46)
113 (±88)
(n= 46)
128 (±55)
(n= 23)
-53 (±79)
(n= 25)
t12
02.10.
92 (±64)
(n= 46)
-11 (±62)
(n= 46)
MW= Mittelwert (arithmetisches Mittel), SD= Standardabweichung, n= Anzahl der
beprobten Tiere
(Die Tierzahlen in Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) verringerten sich durch
Schlachtung bzw. das Verenden einzelner Tiere)
Ergebnisse
63
Abbildung 5: Verlauf der täglichen Zunahmen
4.4.2 Vergleich der täglichen Zunahmen zwischen den Gruppen
Zwischen den weiblichen Gruppen bestand, in Hinsicht auf die täglichen Zunahmen,
insgesamt kein signifikanter Unterschied. Zwar konnten zu den meisten einzelnen
Zeitpunkten signifikante Unterschiede nachgewiesen werden, es waren jedoch zum
Teil die Zunahmen von Gruppe I (TST♀) und zum Teil von Gruppe II (Total♀) höher,
so dass die beiden Verlaufskurven in der Grafik einen insgesamt mehr oder weniger
parallelen Verlauf zeigen.
Die p-Werte der Zeitpunkte mit signifikantem Unterschied können aus Tabelle 10
entnommen werden.
Ergebnisse
64
Tabelle 10: Übersicht über die p-Werte an Zeitpunkten mit signifikanten Unterschieden der Tageszunahmen bei Gruppe I (TST♀) und II (Total♀)
Zeitpunkt p-Wert Vergleich der Gruppen
t3 0,0051 TST < Kontrollgruppe
t4 0,0060 TST > Kontrollgruppe
t6 <0,0001 TST < Kontrollgruppe
t7 0,0001 TST > Kontrollgruppe
t8 0,0020 TST < Kontrollgruppe
t9 0,0039 TST < Kontrollgruppe
t11 0,0075 TST > Kontrollgruppe
t12 <0,0001 TST > Kontrollgruppe
Bei den männlichen Gruppen hatte die Art der Behandlung (TST oder alle Tiere der
Gruppe) einen signifikanten Einfluss (p>0,0001) auf die täglichen Zunahmen. Bis t4
bewegten sich die Zunahmen beider Gruppen auf etwa gleichem Niveau, danach
sanken sie bei beiden Gruppen, wobei Gruppe III (TST♂) von t5 bis t9 signifikant
schlechtere Tageszunahmen aufwies als Gruppe IV (Total♂) (p=0,0001 bei t5 und t7,
p<0,0001 bei t6, t8 und t9). Bei t10 lagen beide Gruppen auf etwa demselben Niveau
(52 (±162) g/d bei Gruppe III (TST♂) und 83 (±85) g/d bei Gruppe IV (Total♂)), an
t11 wies Gruppe IV (Total♂) mit durchschnittlich -53 (±79) g/d deutlich schlechtere
Tageszunahmen auf als Gruppe III (TST♂) mit 128 (±55) g/d.
Die p-Werte der Zeitpunkte mit signifikantem Unterschied können aus Tabelle 11
entnommen werden.
Ergebnisse
65
Tabelle 11: Übersicht über die p-Werte an Zeitpunkten mit signifikanten
Unterschieden der Tageszunahmen bei Gruppe III (TST♂) und IV
(Total♂)
Zeitpunkt p-Wert Vergleich der Gruppen
t5 0,0001 TST < Kontrollgruppe
t6 <0,0001 TST < Kontrollgruppe
t7 0,0001 TST < Kontrollgruppe
t8 <0,0001 TST < Kontrollgruppe
t9 <0,0001 TST < Kontrollgruppe
4.5 FAMACHA-Score
4.5.1 Verlauf
Der durchschnittliche FAMACHA-Scores von Gruppe I (TST♀) und II (Total♀)
bewegte sich im gesamten Versuchszeitraum um Werte zwischen 1 und 2.
Bei den männlichen Gruppen war dies zu Beginn ebenfalls der Fall. Bei t10 stieg der
Wert jedoch deutlich auf 3 (±1) bei Gruppe III (TST♂) und auf 4 (±1) bei Gruppe IV
(Total♂) an.
Tabelle 12 und Abbildung 6 geben die Daten tabellarisch und grafisch wieder.
Ergebnisse
66
Tabelle 12: Mittelwerte, Standardabweichungen und Medianwerte des FAMACHA-
Scores
Gruppe Zeitpunkte
I (TST ♀) MW (SD) Med
II (Total ♀) MW (SD) Med
III (TST ♂) MW (SD) Med
IV (Total ♂) MW (SD) Med
t3 29.05.
2 (±1) 2 (n= 46)
2 (±1) 2 (n= 46)
t4 12.06.
2 (±0,5) 2 (n= 44)
1,5 (±0,5) 2 (n= 45)
t5 26.06.
1,5 (±0,5) 2 (n= 46)
1,5 (±0,5) 1 (n= 46)
t6 10.07.
2,5 (±5) 2 (n= 44)
1,5 (±0,5) 1 (n= 45)
t7 24.07.
1 (±0,5) 1 (n= 46)
1,5 (±0,5) 1 (n= 46)
t8 07.08.
2 (±1) 2 (n= 43)
1,5 (±0,5) 1 (n= 44)
t9 21.08.
1,5 (±0,5) 1 (n= 46)
2 (±1) 2 (n= 46)
t10 04.09.
2 (±1) 2 (n= 46)
2 (±1) 2 (n= 46)
3 (±1) 3 (n= 30)
4 (±1) 4 (n= 30)
t11 19.09.
1,5 (±0,5) 1 (n= 46)
1,5 (±0,5) 1 (n= 46)
t12 02.10.
1,5 (±0,5) 1 (n= 46)
1,5 (±1) 1 (n= 46)
MW= Mittelwert (arithmetisches Mittel), SD= Standardabweichung, Med= Median, n=
Anzahl der beprobten Tiere
(Die Tierzahlen in Gruppe III (TSt♂) und IV (Total♂) verringerten sich durch
Schlachtung bzw. das Verenden einzelner Tiere)
Ergebnisse
67
Abbildung 6: Verlauf des FAMACHA-Score
4.5.2 Vergleich des FAMACHA-Scores zwischen den Gruppen
Zu Beginn des Versuches waren die FAMACHA-Werte bei Gruppe I (TST♀) etwas
höher, ab t7 hatte Gruppe II (Total♀) leicht höhere Werte als Gruppe I (TST♀).
Insgesamt war jedoch ein paralleler Verlauf der Werte von Gruppe I (TST♀) und II
(Total♀) zu verzeichnen. Lediglich bei t7 war der Unterschied zwischen den Gruppen
signifikant (p=0,0075).
Zu Beginn des Versuches befanden sich Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) mit
einem Wert von 1,8 und 1,7 an t4 auf dem gleichen Niveau. An t6 war der
durchschnittliche Wert von Gruppe III (TST♂) mit 2,4 fast einen Score-Punkt höher
als Gruppe IV (Total♂) mit 1,5. Bei t8 lag ein signifikanter Unterschied zwischen den
Gruppen vor (p=0,0409). Gegen Ende der Versuchsphase stiegen die Werte beider
Gruppen deutlich an, nämlich auf 3,2 bei Gruppe III (TST♂) und 3,8 bei Gruppe IV
(Total♂) (t10).
Ergebnisse
68
4.6 Body Condition Score (BCS)
4.6.1 Verlauf
Die durchschnittlichen BCS-Werte von Gruppe I (TST♀), II (Total♀) und IV (Total♂)
bewegten sich über den gesamten Versuchszeitraum um den Wert 3 herum (2,9 bis
3,2).
Lediglich bei Gruppe III (TST♂) konnte ein stetiger Abfall des BCS von anfangs 2,8
bei t4 auf 2,2 bei t10 beobachtet werden.
Die Mittelwerte des BCS und deren grafischer Verlauf sind in Tabelle 13 und
Abbildung 7 dargestellt.
Abbildung 7: Verlauf des BCS
Ergebnisse
69
Tabelle 13: Mittelwerte des BCS
Gruppe Zeitpunkte
I (TST ♀) MW (SD) Med
II (Total ♀) MW (SD) Med
III (TST ♂) MW (SD) Med
IV (Total ♂) MW (SD) Med
t3 29.05.
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
t4 12.06.
3 (±0,5) 3 (n= 44)
3 (±0,5) 3 (n= 45)
t5 26.06.
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
t6 10.07.
2,5 (±0,5) 2,5 (n= 44)
3 (±0,5) 3 (n= 45)
t7 24.07.
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
t8 07.08.
2,5 (±0,5) 2,5 (n= 43)
3 (±0,5) 3 (n= 44)
t9 21.08.
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
t10 04.09.
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
2 (±0,5) 2 (n= 30)
3 (±0,5) 3 (n= 30)
t11 19.09.
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
t12 02.10.
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
3,0 (±0,5) 3,0 (n= 46)
MW= Mittelwert (arithmetisches Mittel), SD= Standardabweichung, Med= Median, n=
Anzahl der beprobten Tiere
(Die Tierzahlen in Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) verringerten sich durch
Schlachtung bzw. das Verenden einzelner Tiere)
Ergebnisse
70
4.6.2 Vergleich des BCS zwischen den Gruppen
Die BCS-Werte von Gruppe I (TST♀) und II (Total♀) sind zu jedem Messzeitpunkt
nahezu identisch. Zwischen beiden Gruppen besteht zu keinem
Untersuchungszeitpunkt ein signifikanter Unterschied.
Zwischen Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) ist der Unterschied im BCS deutlich.
Nach anfangs parallelem Verlauf und nahezu gleichen Mittelwerten bei t4 (2,8 bzw.
2,9) und t6 (2,7 bzw. 2,8) ist der durchschnittliche BCS von Gruppe III (TST♂) bei t8
und t10 signifikant niedriger als der von Gruppe IV (Total♂) (p=0,0003) bei t8,
p<0,0001 bei t10).
4.7 Dag-Score
4.7.1 Verlauf
Bis t7 bewegte sich der Dag-Score bei allen Gruppen mit durchschnittlichen Werten
von unter 0,5 auf einem sehr niedrigen Niveau.
Ab t8 bei den männlichen und t9 bei den weiblichen Gruppen stiegen die Dag-Werte
an, insbesondere bei den beiden TST-Gruppen. Bei diesen wurden Werte von über 1
erreicht. Bei Gruppe III (TST♂) wurden zum Ende hin bei t10 sogar ein
Durchschnittswert von 3,5 erreicht.
Gruppe II (Total♀) und IV (Total♂) hatten bis zum Schluss Werte von unter 1.
Tabelle 14 führt die Mittelwerte auf, Abbildung 8 veranschaulicht sie grafisch.
Ergebnisse
71
Tabelle 14: Mittelwerte des Dag-Score
Gruppe Zeitpunkte
I (TST ♀)
MW (SD)
Med
II (Total ♀)
MW (SD)
Med
III (TST ♂)
MW (SD)
Med
IV (Total ♂)
MW (SD)
Med
t3 29.05.
0,5 (±0,5) 0 (n= 46)
0,5 (±0,5) 0 (n= 46)
t4 12.06.
0,5 (±0,5) 0 (n= 44)
0,5 (±1) 0 (n= 45)
t5 26.06.
0 (±0,5) 0 (n= 46)
0,5 (±0,5) 0 (n= 46)
t6 10.07.
0,5 (±0,5) 0 (n= 44)
0,5 (±0,5) 0 (n= 45)
t7 24.07.
0 (±0,5) 0 (n= 46)
0 (±0) 0 (n= 46)
t8 07.08.
2 (±2) 1 (n= 43)
1 (±1) 0 (n= 44)
t9 21.08.
0,5 (±1) 0 (n= 46)
0,5 (±0,5) 0 (n= 46)
t10 04.09.
1,5 (±1,5) 1,5 (n= 46)
1 (±1) 0 (n= 46)
3,5 (±1) 4 (n= 30)
1 (±1) 0 (n= 30)
t11 19.09.
1,0 (±1,5) 0,5 (n= 46)
1 (±1) 0 (n= 46)
t12 02.10.
1 (±1,5) 0 (n= 46)
1 (±1) 0 (n= 46)
MW= Mittelwert (arithmetisches Mittel), SD= Standardabweichung, Med= Median, n=
Anzahl der beprobten Tiere
(Die Tierzahlen in Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) verringerten sich durch
Schlachtung bzw. das Verenden einzelner Tiere)
Ergebnisse
72
Abbildung 8: Verlauf des Dag-Score
4.7.2 Vergleich des Dag-Score zwischen den Gruppen
Sowohl bei den weiblichen als auch bei den männlichen Gruppen unterschieden sich
TST- und Kontrollgruppe zu mehreren Zeitpunkten signifikant voneinander.
Bei den weiblichen Gruppen waren die Unterschiede bei t9 (p=0,018), t10 (p<0,0001)
und t11 (p=0,0379) signifikant, wobei jeweils die TST-Gruppe höhere Werte aufwies
als die Kontrollgruppe.
Bei den männlichen Gruppen war der Dag-Score der TST-Gruppe bei t8 (p=0,0532)
und t10 (p<0,0001) signifikant höher als der der Kontrollgruppe.
Ergebnisse
73
4.8 Korrelationen
4.8.1 Korrelation der täglichen Zunahmen mit der MDS- und Strongyloides-
EpG
Für die Korrelationsanalyse wurden zum einen je Gruppe die Datenpaare aller Tiere
und aller Zeitpunkte genommen. Zum anderen wurden bei Gruppe I (TST♀) und III
(TST♂) die Daten aller Zeitpunkte und all der Tiere genommen, die durch das TST
nie behandelt wurden.
Die genauen Werte für das Bestimmtheitsmaß, den Korrelationskoeffizienten sowie
die p-Werte der Korrelation der Tageszunahmen mit der MDS-bzw. Strongyloides-
EpG sind in Tabelle 15 und 16 dargestellt.
Abbildung 9 und Abbildung 10 zeigen die Korrelationen der täglichen Zunahmen mit
der MDS-bzw. Strongyloides-EpG über alle Gruppen in grafischer Form.
Tabelle 15: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der Korrelation von Tageszunahmen und MDS-EpG
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,2154 -0,27 <0,0001
II (Total♀) 0,2103 -0,33 <0,0001
III (TST♂) 0,0951 -0,39 <0,0001
IV (Total♂) 0,0784 -0,18 0,029
I (TST♀) nie
behandelte Tiere
0,4902 -0,29 0,00227
III (TST♂) nie
behandelte Tiere
0,198 -0,5 <0,0001
alle Gruppen 0,1183 -0,27678 <0,0001
Ergebnisse
74
Tabelle 16: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der Korrelation von Tageszunahmen und Strongyloides-EpG
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,1904 -0,39 <0,0001
II (Total♀) 0,1157 -0,31 <0,0001
III (TST♂) 0,2696 -0,62 <0,0001
IV (Total♂) 0,4116 -0,61 <0,0001
I (TST♀) nie
behandelte Tiere
0,3134 -0,39 <0,0001
III (TST♂) nie
behandelte Tiere
0,2646 -0,71 <0,0001
alle Gruppen 0,2645 -0,50520 <0,0001
Abbildung 9: Grafische Darstellung der Korrelation der täglichen Zunahmen zu
der MDS-EpG über alle Gruppen
y = 0,0051x2 - 3,2347x + 661,27R² = 0,1183
0
1000
2000
3000
4000
5000
6000
7000
8000
9000
10000
-400,0 -300,0 -200,0 -100,0 0,0 100,0 200,0 300,0 400,0 500,0 600,0
Ergebnisse
75
Abbildung 10: Grafische Darstellung der Korrelation der täglichen Zunahmen zu
der Strongyloides-EpG über alle Gruppen
4.8.2 Korrelation des FAMACHA-Score mit den täglichen Zunahmen und der
MDS-EpG
4.8.2.1 Korrelation des FAMACHA-Score mit den täglichen Zunahmen
Tabelle 17 listet die genauen Korrelationswerte dieser beiden Parameter auf.
Die gruppenübergreifende Korrelation vom FAMACHA Score zu den täglichen
Zunahmen ist in Abbildung 11 grafisch dargestellt.
y = 0,0245x2 - 12,939x + 1980,5R² = 0,2645
0
2000
4000
6000
8000
10000
12000
14000
16000
18000
20000
-400,0 -300,0 -200,0 -100,0 0,0 100,0 200,0 300,0 400,0 500,0 600,0
Ergebnisse
76
Tabelle 17: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der Korrelation zwischen Tageszunahmen und FAMACHA Scores
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,037 -0,02701 0,6616
II (Total♀) 0,0078 0,19463 0,0012
III (TST♂) 0,0372 -0,21686 0,0057
IV (Total♂) 0,0907 -0,25707 0,0009
alle Gruppen 0,0328 -0,14225 <0,0001
Abbildung 11: Grafische Darstellung der Korrelation der täglichen Zunahmen
mit dem FAMACHA Score ohne Trennung nach Gruppen
y = 1E-06x2 - 0,0017x + 1,9261R² = 0,0328
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
-500,0 -400,0 -300,0 -200,0 -100,0 0,0 100,0 200,0 300,0 400,0 500,0 600,0
Ergebnisse
77
4.8.2.2 Korrelation des FAMACHA-Score mit der MDS-EpG
Da der FAMACHA-Score nur durch hämatophage Helminthen beeinflusst wird, ist es
sinnvoll, lediglich die Korrelation des FAMACHA mit der MDS-Eizahl zu bestimmen,
da Haemonchus contortus als blutsaugender Parasit zu den Magen-Darm-
Strongyliden gehört.
In Abbildung 12 und Abbildung 13 sind die Korrelationen von FAMACHA-Score und
MDS-EpG von Gruppe III (TST♂) und Gruppe IV (Total♂) grafisch dargestellt.
Tabelle 18 gibt einen Überblick über die relevanten Werte in dieser Fragestellung.
Tabelle 18: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des FAMACHA-Score und der MDS-EpG
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,0146 -0,13 0,0177
II (Total♀) 0,0861 -0,05 0,4098
III (TST♂) 0,2988 0,36 <0,0001
IV (Total♂) 0,4318 0,4 <0,0001
alle Gruppen 0,1922 0,21062 <0,0001
Ergebnisse
78
Abbildung 12: Grafische Darstellung der Korrelation von FAMACHA Score und
MDS-EpG Gruppe III (TST♂)
Abbildung 13: Grafische Darstellung der Korrelation vom FAMACHA Score und
MDS-EpG Gruppe IV (Total♂)
y = -5E-08x2 + 0,0007x + 1,6905R² = 0,2988
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000
y = -8E-08x2 + 0,0011x + 1,5142R² = 0,4318
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000 10000
Ergebnisse
79
4.8.3 Korrelation des Body Condition Score mit den täglichen Zunahmen, der
MDS- und der Strongyloides-EpG
4.8.3.1 Korrelation des BCS zu den tägliche Zunahmen
In Abbildung 14 ist die Korrelation von BCS und täglichen Zunahmen ohne
Gruppentrennung dargestellt, Abbildung 15 zeigt diese Korrelation für Gruppe III
(TST♂).
Tabelle 19 sind die Korrelationsparameter zu entnehmen.
Tabelle 19: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der Korrelation des BCS und der täglichen Zunahmen
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,0312 0,149 0,0074
II (Total♀) 0,0874 0,196 0,0004
III (TST♂) 0,2427 0,497 <0,0001
IV (Total♂) 0,0109 0,097 0,2191
alle Gruppen 0,097 0,19809 <0,0001
Ergebnisse
80
Abbildung 14: Grafische Darstellung der Korrelation von BCS und täglichen
Zunahmen ohne Trennung nach Gruppen
Abbildung 15: Grafische Darstellung der Korrelation von BCS und täglichen
Zunahmen für Gruppe III (TST♂)
y = -3E-06x2 + 0,0015x + 2,7921R² = 0,097
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
-500,0 -400,0 -300,0 -200,0 -100,0 0,0 100,0 200,0 300,0 400,0 500,0 600,0
y = -4E-08x2 + 0,0014x + 2,4647R² = 0,2427
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
-500,0 -400,0 -300,0 -200,0 -100,0 0,0 100,0 200,0 300,0 400,0 500,0
Ergebnisse
81
4.8.3.2 Korrelation des BCS zur MDS-EpG
Die Korrelation über alle Gruppen ist in Abbildung 16 grafisch dargestellt.
Die Werte zu den Korrelationen von BCS und MDS-EpG zeigt Tabelle 20.
Tabelle 20: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der Korrelation des BCS und der MDS-EpG
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,0187 -0,135 0,0286
II (Total♀) 0,0191 -0,039 0,52
III (TST♂) 0,1418 -0,362 <0,0001
IV (Total♂) 0,0285 0,025 0,7567
alle Gruppen 0,056 -0,14495 <0,0001
Abbildung 16: Grafische Darstellung der Korrelation von BCS und MDS-EpG für
Gruppe III (TST♂)
y = 1E-08x2 - 0,0002x + 2,6986R² = 0,2018
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000
Ergebnisse
82
4.8.3.3 Korrelation BCS zur Strongyloides-EpG
Die grafische Darstellung der Korrelation von BCS und Strongyloides-EpG über alle
Gruppen erfolgt in Abbildung 17.
Die Werte können Tabelle 21 entnommen werden.
Tabelle 21: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des BCS und der Strongyloides-EpG
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,012 -0,06 0,33
II (Total♀) 0,0173 -0,047 0,43
III (TST♂) 0,1453 -0,471 <0,0001
IV (Total♂) 0,1053 0,016 0,8456
alle Gruppen 0,0664 -0,10786 0,0017
Abbildung 17: Grafische Darstellung der Korrelation von BCS und
Strongyloides-EpG für Gruppe III (TST♂)
y = 8E-10x2 - 5E-05x + 2,6755R² = 0,2002
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
0 5000 10000 15000 20000 25000 30000 35000
Ergebnisse
83
4.8.4 Korrelation des Dag-Score mit den täglichen Zunahmen, der MDS- und
der Strongyloides-EpG
4.8.4.1 Korrelation des Dag-Score mit den täglichen Zunahmen
In Abbildung 18 ist die Korrelation des Dag Score mit den täglichen Zunahmen über
alle Gruppen grafisch dargestellt.
Tabelle 22 zeigt Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der
Korrelation des Dag-Score und der täglichen Zunahmen für alle Gruppen.
Signifikante Korrelationen ergaben sich lediglich für die Gruppen II (Total♀) und III
(TST♂), wenngleich sich auch unter Einbeziehung aller Tiere der vier Gruppen eine
signifikante Korrelation ergab.
Tabelle 22: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der Korrelation des Dag-Score und der täglichen Zunahmen
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,0052 -0,051 0,3588
II (Total♀) 0,0372 -0,147 0,0081
III (TST♂) 0,1977 0,411 <0,0001
IV (Total♂) 0,0152 -0,094 0,234
alle Gruppen 0,0815 -0,14234 <0,0001
Ergebnisse
84
Abbildung 18: Grafische Darstellung der Korrelation von Dag-Score und
täglichen Zunahmen für Gruppe III (TST♂)
4.8.4.2 Korrelation des Dag-Score mit der MDS-EpG
Abbildung 19 stellt die gruppenübergreifende Korrelation von Dag Score und MDS-
EpG grafisch dar.
Eine Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der
Korrelation des Dag-Score und der MDS-EpG gibt Tabelle 23. Lediglich für die
Gruppe III (TST♂) ergab sich eine signifikante Korrelation zwischen den Parametern.
y = 1E-05x2 - 0,0047x + 1,235R² = 0,1977
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
-600,0 -400,0 -200,0 0,0 200,0 400,0 600,0
Ergebnisse
85
Tabelle 23: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des Dag-Score und der MDS-EpG
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,0064 0,080 0,1939
II (Total♀) 0,0661 0,096 0,1107
III (TST♂) 0,2589 0,395 <0,0001
IV (Total♂) 0,0233 0,113 0,0676
alle Gruppen 0,0529 0,17331 <0,0001
Abbildung 19: Grafische Darstellung der Korrelation von Dag-Score und MDS-
EpG für Gruppe III (TST♂)
4.8.4.3 Korrelation des Dag-Score mit der Strongyloides-EpG
Eine Darstellung der Korrelation der beiden Parameter über alle Gruppen erfolgt in
Abbildung 20. Bei Betrachtung der einzelnen Gruppen ergaben sich signifikante
Korrelationen zwischen den Parametern nur bei den beiden männlichen Gruppen.
y = -2E-07x2 + 0,0014x + 0,3651R² = 0,2589
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
0 2000 4000 6000 8000 10000
Ergebnisse
86
Die genauen Werte zur Korrelation des Dag-Score gibt Tabelle 24 wieder.
Tabelle 24: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte der Korrelation des Dag-Score und der Strongyloides-EpG
Gruppe Bestimmtheitsmaß R² Korrelationskoeffizient p-Wert
I (TST♀) 0,0052 0,05 0,4202
II (Total♀) 0,0008 -0,041 0,4896
III (TST♂) 0,191 0,508 <0,0001
IV (Total♂) 0,0477 0,214 0,0078
alle Gruppen 0,0482 0,16291 <0,0001
Abbildung 20: Grafische Darstellung der Korrelation von Dag-Score und
Strongyloides-EpG für Gruppe III (TST♂)
y = -6E-09x2 + 0,0003x + 0,6204R² = 0,191
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
0 5000 10000 15000 20000 25000 30000 35000
Ergebnisse
87
Abbildung 21: Grafische Darstellung der Korrelation von Dag-Score und
Strongyloides-EpG für Gruppe IV (Total♂)
4.9 Eizahlreduktionstests
Zum Eizahlreduktionstest wurden nur Tiere heran gezogen, die vor der Behandlung
eine EpG von >150 aufwiesen (COLES et al., 2006).
Bei dem Eizahlreduktionstest gelten Fenbendazol und Levamisol als nicht wirksam,
wenn die Eizahlreduktion < 95% und das untere 95%-Konfidenzintervall < 90%
Reduktion liegen (COLES et al., 1992).
Bei sämtlichen Eizahlreduktionstests die nach Fenbendazolbehandlungen
durchgeführt wurden (sowohl mit 5 mg/kg, als auch mit 40 mg/kg) wurden die 95%
Eizahlreduktion nicht erreicht, auch das untere Konfidenzintervall lag hier stets unter
90%. Demnach war eine Fenbendazolresistenz vorhanden. In einigen Fällen führte
die Behandlung zu einer Reduktion der Eizahl um weniger als 50%.
Levamisol war wirksam mit Ausnahme bei Strongyloides bei den männlichen Tieren.
Aus der Tabelle 25 sind die Zeitpunkte und Werte der Eizahlreduktionstests zu
entnehmen.
y = -2E-08x2 + 0,0002x + 0,3509R² = 0,0477
-1
0
1
2
3
4
5
0 5000 10000 15000 20000
Ergebnisse
88
Tabelle 25: Ergebnisse Eizahlreduktionstests MDS und Strongyloides
Gruppe Zeitraum Präparat/
Dosierung
MDS Strongyloides
n EZR uCL lCL n EZR uCL lCL
III
(TST♂)
04.09.
11.09.
Fenbendazol
40 mg/kg 10 81% 90%
65
% 10 54% 78% 7%
IV
(Total♂)
04.09.
11.09.
Fenbendazol
5 mg/kg 11 5% 55% 0% 11 -73% 11% 0%
Fenbendazol
40 mg/kg 9 28% 79% 0% 9 49% 79% 0%
I (TST♀)
06.09.
18.09.
Fenbendazol
40 mg/kg 19 71% 81% 60
% 25 61% 78% 28%
II
(Total♀)
06.09.
18.09.
Fenbendazol
40 mg/kg 26 50% 69%
19
% 27 59% 74% 37%
III
(TST♂)
und
IV
(Total♂)
11.09.
25.09.
Levamisol
8 mg/kg
20 99% 100% 95
% 25 33% 70% 0%
I (TST♀)
behandel
te Tiere
(TST)
02.10.
09.10.
Fenbendazol
5 mg/kg
(TST -> 25%
behandelt)
6 25% 49% 0% 7 -55% 13% 0%
Ergebnisse
89
I (TST♀)
nicht
behandel
te Tiere
9 -73% 2% 0% 13 -21% 38% 0%
II
(Total♀)
02.10.
09.10.
Fenbendazol
5 mg/kg
23 35% 69% 0% 26 8% 51% 0%
I (TST♀) 09.10.
25.10.
Levamisol
8 mg/kg
(18.10.)
15 99% 100% 93
% 19 96% 99% 89%
II
(Total♀)
09.10.
25.10.
Levamisol
8 mg/kg
(18.10.)
19 99% 100% 93
% 24 96% 99% 91%
Die nachfolgende Abbildung 22 stellt die Ergebnisse der Eizahlreduktionstests
grafisch dar.
Ergebnisse
90
Abbildung 22: Grafische Darstellung der Ergebnisse der Eizahlreduktionstests
(EZR= Eizahlreduktion; uCL= oberes 95% Konfidenzintervall (upper confidence
level); lCL= unteres 95% Konfidenzintervall (lower confidence level).
4.10 Differenzierung der Nematoden aus den parasitologischen Sektionen
Aus Gruppe I (TST♀) gelangten fünf Tiere in die parasitologische Sektion. Vier davon
wurden fünf Wochen vor der Schlachtung mit 40 mg/kg Fenbendazol behandelt, ein
Tier bekam zwei Wochen vor der Schlachtung 5 mg/kg Fenbendazol.
Aus Gruppe II (Total♀) wurden fünf Tiere geschlachtet, zwei gelangten nach
Euthanasie in die parasitologische Sektion. Diese zwei Tiere erhielten die letzte
Behandlung 3 Wochen vor der Euthanasie in Form von 5 mg/kg Fenbendazol. Die
fünf geschlachteten Tiere erhielten zwei Wochen vorher Fenbendazol in der gleichen
Dosierung.
Aus Gruppe III (TST♂) wurden 15 Tiere geschlachtet. Hiervon erhielten sieben Tiere
Ergebnisse
91
fünf Wochen vor der Schlachtung 5 mg/kg Fenbendazol. Die restlichen acht Tiere
gehörten zu denjenigen, die beim TST zu jedem Zeitpunkt zu den Tieren mit den
besseren täglichen Zunahmen gehörten und demnach nie behandelt wurden.
Aus Gruppe IV (Total♂) gelangten 15 Tiere zur Schlachtung. Diese wurden fünf
Wochen vorher mit 5 mg/kg Fenbendazol behandelt. Ein Tier aus Gruppe IV verstarb
und wurde in der Folge parasitologisch seziert. Dieses Tier bekam 24 Tage vor
seinem Tod die letzte Fenbendazolbehandlung (5mg/kg).
Tabelle 26: Übersicht über die Schlacht-bzw. Todesdaten der Tiere, deren letzte Behandlung sowie die Art der Behandlung (Präparat, Dosierung)
Gruppe Anzahl
der
Tiere
Schlacht-
/Todesdatu
m
Datum der
letzten
Behandlung
Präparat, Dosierung
I (TST♀) 1 15.10. 02.10. (t12) Fenbendazol, 5mg/kg
4 15.10. 06.09. (t10) Fenbendazol, 40 mg/kg
II (Total♀) 5 15.10. 02.10. (t12) Fenbendazol, 5mg/kg
2 22.10.
(Euthanasie)
02.10. Fenbendazol, 5mg/kg
III (TST♂) 3 13.08. 10.07. (t6) Fenbendazol, 5mg/kg
4 10.09. 07.08. (t8) Fenbendazol, 5mg/kg
7 13.08. nie -
1 10.09. nie -
IV (Total♂) 10 13.08. 10.07. (t6) Fenbendazol, 5mg/kg
5 10.09. 07.08. (t8) Fenbendazol, 5mg/kg
1 31.08.
(gestorben)
07.08. (t8) Fenbendazol, 5mg/kg
Ergebnisse
92
4.10.1 Labmagen
Im Labmagen war bei Gruppe I (TST♀) mit durchschnittlich 49,3±46,6%
Teladorsagia die häufigste Gattung vor Haemonchus mit 26,7±43,5% und
Trichostrongylus mit 4±8,9%.
Bei Gruppe II (Total♀) hatte im Labmagen Haemonchus mit durchschnittlich
70,3±41% den größten Anteil. Teladorsagia machte im Mittel 29,5±40,8% und
Trichostrongylus 0,2±0,5% aus.
Bei den Tieren der Gruppe III (TST♂) wurde der Labmagen vor allem von der
Gattung Teladorsagia besiedelt (75,2±31,8%). Haemonchus kam zu einem Anteil
von 16,7±25,2%, Trichostrongylus von 1,4±2,8% vor.
Am häufigsten konnte im Labmagen von Gruppe IV (Total♂) Teladorsagia mit
79,3±27,0 nachgewiesen werden. Haemonchus kam zu einem Anteil von
20,3±26,8% vor, Trichostrongylus lediglich von 0,4±1,0%.
Die Verteilung der Nematodengattungen bei den Sentineltieren geht aus Tabelle 27
hervor.
Tabelle 27: Prozentuale Verteilung der Nematodengattungen im Labmagen der Sentineltiere
Tier
Gattung
S♀ 1 S♀ 2 S♂ 1 S♂ 2
% % % %
Teladorsagia 90,8 55,6 80,3 81,8
Haemoncus 6,6 38,9 33,3 7,3
Trichostrongylus 2,6 5,6 6,3 10,9
Ergebnisse
93
Abbildung 23: Grafische Übersicht (Boxplot) über die Verteilung der
Nematodengattungen im Labmagen der Versuchsgruppen.
Die unteren und oberen Grenzen der Kasten markieren das
untere bzw. obere Quartil. Die Linien innerhalb der Kasten stellen
den Medianwert dar. Die unteren und oberen Whisker enden
beim Minimal-bzw. Maximalwert.
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
80,0
90,0
100,0
I (TS
T♀)
II (
Tota
l♀)
III (
TST♂
)
IV (
Tota
l♂)
I (TS
T♀)
II (
Tota
l♀)
III (
TST♂
)
IV (
Tota
l♂)
I (TS
T♀)
II (
Tota
l♀)
III (
TST♂
)
IV (
Tota
l♂)
Teladorsagia Haemonchus Trichostrongylus
Ergebnisse
94
Abbildung 24: Grafische Übersicht über die Verteilung der
Nematodengattungen im Labmagen der Sentineltiere
4.10.2 Dünndarm
Im Dünndarm von Gruppe I (TST♀) dominierte Strongyloides mit im Mittel
66,2±28,6%, gefolgt von Cooperia 16,6±19,8%, Nematodirus 8,6±9,2%,
Trichostrongylus 7,2±10,4 und Bunostomum 1,4±3,2%.
Die meist vertretene Gattung im Dünndarm von Gruppe II (Total♀) war Strongyloides
45,1±33,1%. Etwas weniger vertreten war Cooperia mit durchschnittlich 27,2±33,1%.
Trichostrongylus (6,7±8,7%) und Nematodirus (6,8±11,6%) waren kaum vertreten,
Bunostomum konnte gar nicht nachgewiesen werden.
Im Dünndarm von Gruppe III (TST♂) machte Strongyloides mit 40,1±22,8% den
Hauptanteil aus, gefolgt von Cooperia mit 33,3±20,8% und Nematodirus 22±16,2%.
Trichostrongylus und Bunostomum machten mit 3,5±3,7% bzw. 1,1± 2,6% nur einen
sehr geringen Teil aus.
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
S♀1 S♀2 S♂1 S♂2
Trichostrongylus
Haemonchus
Teladorsagia
Ergebnisse
95
Im Dünndarm von Gruppe IV (Total♂) machte Strongyloides einen Anteil von
39,8±25,9%, Cooperia von 33,7±24,0% und Nematodirus von 21,2±24,7% aus.
Weniger stark vertreten waren Trichostrongylus mit 4,8± 6,7% und Bunostomum mit
lediglich 0,4±1,1%.
Tabelle 28: Prozentuale Verteilung der Nematodengattungen im Dünndarm der Sentineltiere
Tier
Gattung
S♀ 1 S♀ 2 S♂ 1 S♂ 2
% % % %
Trichostrongylus 0 0 3,3 11,8
Cooperia 0 0 40,0 35,3
Nematodirus 10,5 14,7 13,3 2,9
Bunostomum 15,8 5,9 6,7 0
Strongyloides 73,7 79,4 36,7 50,0
Ergebnisse
96
Abbildung 25: Grafische Übersicht über die Verteilung der
Nematodengattungen im Dünndarm der Versuchsgruppen.
Die unteren und oberen Grenzen der Kasten markieren das
untere bzw. obere Quartil. Die Linien innerhalb der Kasten stellen
den Medianwert dar. Die unteren und oberen Whisker enden
beim Minimal-bzw. Maximalwert.
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
80,0
90,0
100,0
I (TS
T♀)
II (
Tota
l♀)
III (
TST♂
)
IV (
Tota
l♂)
I (TS
T♀)
II (
Tota
l♀)
III (
TST♂
)
IV (
Tota
l♂)
I (TS
T♀)
II (
Tota
l♀)
III (
TST♂
)
IV (
Tota
l♂)
I (TS
T♀)
II (
Tota
l♀)
III (
TST♂
)
IV (
Tota
l♂)
I (TS
T♀)
II (
Tota
l♀)
III (
TST♂
)
IV (
Tota
l♂)
Trichostrongylus Cooperia Nematodirus Bunostomum Strongyloides
Ergebnisse
97
Abbildung 26: Grafische Übersicht über die Verteilung der
Nematodengattungen im Dünndarm der Sentineltiere.
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
S♀1 S♀2 S♂1 S♂2
Strongyloides
Bunostomum
Nematodirus
Cooperia
Trichostrongylus
Ergebnisse
98
4.10.3 Dickdarm
Aus dem Dickdarm konnten insgesamt bei Gruppe I (TST♀) nur drei Nematoden von
zwei Tieren isoliert werden. Dies waren alles Exemplare der Gattung
Oesophagostomum.
Auch bei Gruppe II (Total♀) wurden nur sehr wenige Nematoden aus dem Dickdarm
gewonnen. Hier machte aber ebenfalls Oesophagostomum mit durchschnittlich 39,3±
49,7% den größten Teil aus. Bei einem Tier konnte Trichuris nachgewiesen werden,
was einen mittleren prozentualen Anteil von 3,6± 9,4% ergab.
Im Dickdarm von Gruppe III (TST♂) kamen Oesophagostomum zu 61,6±28,3%,
Chabertia zu 30,5±24,8% und Trichuris zu 1,2±2,5% vor.
Im Dickdarm war bei Gruppe IV (Total♂) vor allem Oesophagostomum nachweisbar
(75,8±34,0%). Chabertia hatte einen Anteil von 7,4±14,4% und Trichuris von
4,3±12,7%.
Tabelle 29: Prozentuale Verteilung der Nematodengattungen im Dickdarm der Sentineltiere
Tier
Gattung
S♀ 1 S♀ 2 S♂ 1 S♂ 2
% % % %
Oesophagostomum 0 0 78,4 88,9
Chabertia 0 0 21,6 11,1
Trichuris 0 0 0 0
Ergebnisse
99
Abbildung 27: Grafische Übersicht über die Verteilung der
Nematodengattungen im Dickdarm aller Gruppen.
Die unteren und oberen Grenzen der Kasten markieren das
untere bzw. obere Quartil. Die Linien innerhalb der Kasten stellen
den Medianwert dar. Die unteren und oberen Whisker enden
beim Minimal-bzw. Maximalwert.
0,0
10,0
20,0
30,0
40,0
50,0
60,0
70,0
80,0
90,0
100,0
I (TST♀) II
(Total♀)
III
(TST♂)
IV
(Total♂)I (TST♀) II
(Total♀)
III
(TST♂)
IV
(Total♂)I (TST♀) II
(Total♀)
III
(TST♂)
IV
(Total♂)
Oesophagostomum Chabertia Trichuris
Ergebnisse
100
Abbildung 28: Grafische Übersicht über die Verteilung der
Nematodengattungen im Dickdarm der Sentineltiere
4.10.4 Auswertung ohne Trennung nach Darmabschnitten
Beim Vergleich der prozentualen Verteilung der Nematodengattungen ohne
Unterteilung der Darmabschnitte hatte bei Gruppe I (TST♀) Strongyloides mit 55,6%
im Mittel den größten Anteil.
In Vergleich des gesamten Magen-Darm-Traktes machten bei Gruppe II (Total♀)
Haemonchus und Strongyloides mit jeweils rund 30% die größten Anteile aus.
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
S♀1 S♀2 S♂1 S♂2
Chabertia
Oesophagostomum
Ergebnisse
101
In der Auswertung ohne Trennung nach Darmabschnitten kamen bei Gruppe III
(TST♂) am häufigsten Teladorsagia (28,2%), Strongyloides (19%) und Cooperia
(17,9%) vor.
Insgesamt hatte bei Gruppe IV (Total♂) Teladorsagia mit 32,3% den größten Anteil.
Tabelle 30 zeigt alle Mittelwerte und Standardabweichungen der
Nematodengattungen bei der Auswertung ohne Unterteilung nach Darmabschnitt.
Tabelle 30: Übersicht über Mittelwerte (MW) und Standardabweichungen (SD) der Nematodengattungen der Versuchsgruppen ohne Unterteilung nach Darmabschnitt
I (TST♀) II (Total♀) III (TST♂) IV (Total♂)
Gattung MW
(%)
SD
(%)
MW
(%)
SD
(%)
MW
(%)
SD
(%)
MW
(%)
SD
(%)
Teladorsagia 10,1 9,7 9,1 16 28,2 19,5 32,3 15,1
Haemonchus 2,7 4,4 27,8 34,5 4,7 6,8 10,5 14,7
Trichostrongylus 6,3 7,4 3,4 4 2,2 1,9 3,0 5,1
Cooperia 13,2 16,1 22,1 27,5 17,9 14,1 15,5 10,9
Nematodirus 8,3 18,5 2,9 5 11,6 9,5 7,7 7,9
Bunostomum 1,4 3,1 0 0 0,5 1,3 0,1 0,3
Strongyloides 55,6 27,6 30,9 26,1 19,0 10,3 17,5 15,7
Oesophagostomum 2,4 4 3,4 6,3 10,2 8,4 11,6 10,9
Chabertia 0 0 0 0 5,4 5,0 1,4 2,6
Trichuris 0 0 0,3 0,8 0,3 0,8 0,4 0,9
Ergebnisse
102
Ergebnisse
103
Vorherige Seite:
Abbildung 29: Grafische Übersicht über die Verteilung der
Nematodengattungen der Versuchsgruppen.
Die unteren und oberen Grenzen der Kasten markieren das
untere bzw. obere Quartil. Die Linien innerhalb der Kasten stellen
den Medianwert dar. Die unteren und oberen Whisker enden
beim Minimal-bzw. Maximalwert.
Tabelle 31: Übersicht über die prozentuale Verteilung der Nematodengattungen der Sentineltiere ohne Unterteilung nach Darmabschnitt
Tier
Gattung
S♀ 1 S♀ 2 S♂ 1 S♂ 2
% % % %
Teladorsagia 72,6 19,2 26,4 38,8
Haemonchus 5,3 13,5 14,6 3,4
Trichostrongylus 2,1 1,9 3,5 8,6
Cooperia 0 0 8,3 10,3
Nematodirus 2,1 9,6 2,8 0,9
Bunostomum 3,2 3,8 1,4 0
Strongyloides 14,7 51,9 7,6 14,7
Oesophagostomum 0 0 27,8 20,7
Chabertia 0 0 7,6 2,6
Trichuris 0 0 0 0
Ergebnisse
104
Abbildung 30: Grafische Darstellung der Verteilung der Nematodengattungen
der Sentineltiere ohne Unterteilung nach Darmabschnitten
4.11 Behandlungen im Rahmen des TST
Von Gruppe I (TST♀) wurden insgesamt 20 Tiere mindestens einmal im Rahmen des
TST behandelt. Bei dieser Aufstellung wurde die Behandlung an t10 (Anfang
September) nicht berücksichtigt, da an diesem Termin alle Tiere, auch aus den TST-
Gruppen, außerplanmäßig behandelt wurden. Von diesen 20 behandelten Tieren
bekamen 17 nur eine einzige Behandlung. Vier Tiere wurden zweimal behandelt,
jedoch mit mindestens einem dazwischen liegendem Behandlungstermin. Fünf Tiere
mussten zweimal direkt hintereinander, also im Abstand von vier Wochen behandelt
werden, vier davon benötigten auch noch eine dritte Behandlung.
Aus Gruppe III (TST♂) wurden 20 Tiere im Rahmen des TST behandelt. Alle diese
Tiere erhielten nur eine Behandlung (mit Ausnahme von der Behandlung an t10).
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
S♀1 S♀2 S♂1 S♂2
Trichuris
Chabertia
Oesophagostomum
Strongyloides
Bunostomum
Nematodirus
Cooperia
Trichostrongylus
Haemonchus
Teladorsagia
Ergebnisse
105
4.12 Reduktion der Anzahl der Behandlungen und des Anthelmintikaeinsatzes
Die Anzahl der Behandlungen konnte bei Gruppe I (TST♀) im Vergleich zu Gruppe II
(Total♀) um 80% und die Anthelmintikamenge um 81% gesenkt werden. Hierbei
wurden die Daten von t10, dem Zeitpunkt zu dem alle Tiere außerplanmäßig mit
größtenteils achtfacher Fenbendazoldosis behandelt wurden, nicht berücksichtigt.
In Gruppe I (TST♀) waren es 17 Tiere, die, mit Ausnahme von t10, nie behandelt
wurden.
Bei Gruppe III (TST♂) konnte die Anzahl der Behandlungen im Vergleich zu Gruppe
IV (Total♂) um 85% reduziert werden. Die Reduktion der Anthelmintikamenge betrug
hier ebenfalls 85%. In Gruppe III (TST♂) wurden 24 Tiere nie behandelt (außer an
t10).
Im Vergleich beider TST-Gruppen (I und III) gegenüber den komplett behandelten
Gruppen (II und IV) betrug die Reduktion der Behandlungsanzahl 82%, die der
Anthelmintikamenge 83%.
Diskussion
106
5 Diskussion
Ziel der Studie war die Erprobung des Targeted Selective Treatments als
Entwurmungskonzept zur Eindämmung der Resistenzbildung unter
niedersächsischen Bedingungen in Hinsicht auf Praktikabilität und Wirtschaftlichkeit.
Dazu wurden Körperkondition, tägliche Zunahmen, Dag-Score, FAMACHA-Score
und Eiausscheidungen von mit TST behandelten Gruppen mit vollständig
entwurmten Gruppen verglichen.
Zunächst sollte erwähnt werden, dass auf dem Versuchsbetrieb unerwartet eine
hochgradige Resistenz der Endoparasiten gegen den verwendeten Wirkstoff
Fenbendazol vorlag. Diese Tatsache muss bei der Bewertung der Ergebnisse
beachtet werden. Insbesondere muss bedacht werden, dass das TST unter diesen
Umständen in der durchgeführten Form nicht wirken konnte. Diese Resistenz war
jedoch vor Versuchsbeginn nicht bekannt. Fenbendazol war im Betrieb zuletzt acht
Jahre zuvor einmal eingesetzt worden, bis 14 Jahre zuvor waren Benzimidazole
jedoch fast ausschließlich und regelmäßig zur Entwurmung eingesetzt worden.
5.1 Verwendete Methoden
5.1.1 Auswahl der Tiere für das TST
5.1.1.1 Tägliche Zunahmen
Als Selektionskriterium zur Behandlung wurden in den beiden TST-Gruppen die
täglichen Zunahmen verwendet. Es wurden nur die 25% der Tiere entwurmt, die in
den vergangenen vier Wochen die geringsten täglichen Zunahmen aufgewiesen
hatten. Vorteil dieser Methode ist, dass auf jeden Fall bei jeder Behandlung ein
ausreichender Teil der Tiere nicht behandelt wird, d.h. es ist immer eine gewisse
Größe des Refugiums gewährleistet.
Dieses Konzept bringt allerdings auch gewisse Nachteile mit sich. Zum einen
müssen jedes Mal erst alle Tiere der Gruppe gewogen werden, um die 25% mit den
geringsten täglichen Zunahmen ermitteln zu können. Das bedeutet, dass die
Diskussion
107
gesamte Gruppe zwei Mal durch die Fangeinrichtung getrieben werden muss; einmal
zur Wiegung, ein zweites Mal zur Anthelmintikabehandlung. Die Folge ist ein
erhöhter Arbeits- und Zeitaufwand sowie vermehrter Stress für die Tiere.
Die Grundidee des TST-Konzeptes ist, nur diejenigen Tiere zu behandeln, die eine
Behandlung benötigen (KENYON et al., 2009). Hier ergibt sich ein weiterer Nachteil
der 25%-Auswahl. Benötigen mehr als 25% der Tiere der Gruppe eine Behandlung,
bleiben behandlungswürdige Tiere unbehandelt. Andererseits besteht bei der fixen
Festlegung des Anteils der zu behandelnden Tiere die Gefahr, dass zu viele Tiere
behandelt werden. Diese Gefahr besteht beispielsweise zu Beginn der
Weideperiode, wenn die Parasitenbelastung noch gering und die Leistung der Tiere
generell auf einem guten Niveau ist. Die Folge ist ein unnötiger Anthelmintikaeinsatz,
der unter dem Aspekt der Verringerung der Resistenzselektion als negativ zu werten
ist. Demnach wäre es demnach besser, den Anteil der zu behandelnden Tiere etwas
flexibler zu gestalten und der jeweiligen Situation anzupassen. Natürlich müsste auch
hierbei darauf geachtet werden, dass das Refugium immer in gewisser Größe
erhalten bleibt.
Inwieweit der Anteil in der Größenordnung von 25% behandelten Tieren geeignet ist,
lässt sich auf Basis der Daten aus dem durchgeführten Versuch unter dem Aspekt
der vorliegenden Resistenz schwer beurteilen. Bei den weiblichen Tieren lagen die
TST- und die Kontrollgruppe über den gesamten Versuchszeitraum hinweg auf etwa
demselben Niveau, was die Mastleistung betrifft. Auch STAFFORD et al. (2009) und
GABA et al. (2010) erzielten mit auf Tageszunahmen basierenden TST-Versuchen
vergleichbare Mastleistungen zwischen TST- und Kontrollgruppe. Bei der männlichen
TST-Gruppe im hiesigen Versuch gab es allerdings ab Mitte Juli deutliche Einbußen
in der Mastleistung und eine massive Erhöhung der MDS- und Strongyloides-
Eizahlen. Die Ursache der schlechten Entwicklung vor allem der Gruppe III (TST♂)
ist in der Anthelmintika-Resistenz und nicht in der Anwendung des TST zu sehen,
weil es auch bei Gruppe IV (Total♂) trotz Behandlung zum Anstieg der Eizahlen, zur
Stagnation der Gewichtsentwicklung sowie zu klinischen Erscheinungen in Form von
Diskussion
108
Anämie und Diarrhoe kam. Bestätigt wird dies durch die Ergebnisse der
Eizahlreduktionstests.
Eine andere Methode, die TST-Tiere auszuwählen, wäre, alle Tiere zu entwurmen,
deren Tageszunahmen unter einem gewissen Grenzwert liegen. Bei dieser
Vorgehensweise könnte eine Behandlungsentscheidung direkt beim Wiegen
getroffen werden, was eine deutliche Arbeitsersparnis mit sich brächte. Zudem
würden alle behandlungswürdigen Tiere entwurmt, auch wenn es sich dabei um
mehr als 25% der Herde handelt. Dies kann zwar unter Tierschutzaspekten durchaus
vertretbar sein. Andererseits wird dadurch jedoch das Refugium verkleinert und die
Gefahr der Resistenzselektion steigt. Bereits ab einem Anteil von 30-40%
behandelter Tiere steigt das Resistenzniveau deutlich an ((GABA et al., 2010; GABA
et al., 2012).
Ein Modell, bei dem alle Tiere, die unter einem bestimmten Leistungsniveau liegen,
behandelt werden, ist der sogenannte Happy Factor. Bei diesem unter anderem die
täglichen Zunahmen dazu heran gezogen werden, um ein Leistungsziel zu
errechnen, anhand dessen eine Behandlungsentscheidung für das jeweilige Tier
getroffen werden kann (GREER et al., 2009; BUSIN et al., 2013; KENYON et al.,
2013). Hierbei konnte hinsichtlich des Anteils der behandelten Tiere eine
Größenordnung von durchschnittlich rund 25% erreicht werden. Gleichzeitig konnte
der Anthelmintikaeinsatz um 50% reduziert und eine gute Leistung der Tiere erreicht
werden (BUSIN et al., 2013; KENYON et al., 2013).
Die generellen Vorteile der täglichen Zunahmen als Indikator für die Auswahl der zu
behandelnden Tiere liegen darin, dass sie schnell und nicht invasiv zu ermitteln sind
und sich automatisierbar mit Hilfe elektronischer Ohrmarken und Computersysteme
ermitteln lassen (BESIER, 2008; STAFFORD et al., 2009). Zudem lassen sich durch
Ermittlung der täglichen Zunahmen die betroffenen Tiere in der Regel vor Auftreten
deutlicher Leistungseinbußen abfangen. Sollten Tiere mit hoher Wurmbürde
aufgrund guter täglicher Zunahmen nicht entwurmt werden, spricht dies für eine gute
Widerstandsfähigkeit der entsprechenden Individuen und hat kaum negative
Auswirkungen. Diese Tiere tragen zwar zur Weidekontamination bei, was jedoch
Diskussion
109
hinsichtlich der Erhaltung eines Refugiums als positiver Effekt gesehen werden kann
(STAFFORD et al., 2009).
Letztendlich sind die täglichen Zunahmen für Schäfer bei der Mastlämmerproduktion
ohnehin ein interessanter Leistungsparameter, der ihnen über das
Entwurmungsmanagement hinaus wertvolle Informationen über den Leistungsstand
der Herde liefert (STAFFORD et al., 2009).
Im vorliegenden Versuch lag der p-Wert bei der Korrelation der täglichen Zunahmen
sowohl der MDS-wie auch der Strongyloides-EpG bei unter 0,0001, jedoch lag bei
der Korrelation zur MDS-EpG der Korrelationskoeffizient nur bei -0,3, weshalb
lediglich ein eher mäßiger Zusammenhang angenommen werden kann. Bei der
Korrelation zu der Strongyloides-EpG liegt der Korrelationskoeffizient hingegen
bei -0,5, was dafür spricht, dass hochgradige Infektionen mit Strongyloides spp. unter
den gegebenen Bedingungen einen deutlicheren Einfluss auf die täglichen
Zunahmen haben, als reine Infektionen mit Magen-Darm-Strongyliden. Vergleicht
man allerdings den Korrelationskoeffizient zwischen täglichen Zunahmen und den
EpGs mit denen der Korrelationen zwischen FAMACHA, Dag und BCS und den
EpGs ist die Korrelation der täglichen Zunahmen mit den EpGs über alle Gruppen
genommen deutlich höher. Das zeigt, dass der Parameter tägliche Zunahmen
deutlich besser die Tiere mit einer hohen Wurmbürde erkennen konnte als die
klinischen Scores. Die Tiere mit hohen Wurmbürden waren häufig zugleich auch
diejenigen, die durch die Endoparasitose Leistungseinbußen zeigten. Betrachtet man
jedoch die stärker betroffenen Gruppen, vor allem Gruppe III (TST♂), findet man
auch zwischen den Scores und den EpGs Korrelationen, die mit der Höhe der
Korrelation der Tageszunahmen und der MDS-EpG für diese Gruppe vergleichbar
sind. Bei dieser Gruppe korrelieren die Tageszunahmen und auch der Dag-Score
deutlich mit der Strongyloides-EpG.
Von 29 Tieren aus Gruppe I (TST♀), die über den Versuchszeitraum im Rahmen des
TST behandelt wurden, wurden 17 Tiere nur einmal behandelt (mit Ausnahme der
Behandlung an t10). Weitere vier Tiere erhielten zwar zwei Behandlungen,
dazwischen lag jedoch mindestens ein Termin, an dem diese Tiere keine
Diskussion
110
Behandlung erhielten. Aus Gruppe III (TST♂) erhielten alle 20 Tiere, die behandelt
wurden, nur eine einzige Behandlung (mit Ausnahme der Behandlung an t10). Dies
kann als Indiz dafür gesehen werden, dass durch die täglichen Zunahmen die Tiere
herausgefunden wurden, deren schlechte Leistung Endoparasiten bedingt war. Denn
nach der Behandlung, und somit im Idealfall nach Beseitigung der Endoparasitose,
wiesen diese Tiere im Vergleich zu ihren Gruppenmitgliedern wieder bessere
Zunahmen auf. Jedoch muss auch hier das Vorliegen der Anthelmintikaresistenz mit
berücksichtigt werden. Es stellt sich die Frage, wieviel Einfluss auf die Endoparasiten
tatsächlich durch die Behandlung genommen wurde.
Auch BESIER (2008) befand die täglichen Zunahmen für einen besseren Indikator
als den BCS. Ebenfalls gute Erfahrungen mit diesem Indikator machten GABA et al.
(2010), der alle Lämmer mit täglichen Zunahmen von unter 0,1 kg behandelte, und
STAFFORD et al. (2009), der die 25% mit den besten täglichen Zunahmen
unbehandelt ließ. Dennoch ermittelte STAFFORD et al. (2009) auf Basis von EpG-
Zählungen eine weitestgehende Unabhängigkeit der täglichen Zunahmen von der
Wurmbürde und machte damit genau gegenteilige Erfahrungen im Vergleich zum
vorliegenden Versuch.
Im Gegensatz zu oben genannten Studien, die alle in eher gemäßigten Zonen
durchgeführt wurden, haben sich die täglichen Zunahmen in Steppenregionen als
eher unzuverlässiger Indikator herausgestellt (BENTOUNSI et al., 2012).
Bei den täglichen Zunahmen ist der Einfluss der Ernährung zu bedenken (BESIER,
2008). GREER et al. (2009) berücksichtigt diesen Faktor durch Einbeziehung der
Energieaufnahme aus Weideaufwuchs und gegebenenfalls aus Milch zusätzlich zu
den Gewichtszunahmen, um einen Grenzwert der täglichen Zunahmen zu ermitteln,
unterhalb dessen die Tiere behandelt werden.
Über die täglichen Zunahmen hinaus gibt es andere Indikatoren, die als TST-
Indikatoren denkbar wären. Der Body Condition Score, der Dag-Score sowie der
FAMACHA-Score wurden im beschriebenen Versuch mit erfasst. Des Weiteren gibt
es noch weitere Anzeichen für Parasitenbefall, wie Nasenausfluss, Unterhautödeme
oder stumpfes Vlies, die einzeln oder in Kombination als TST-Indikator heran
Diskussion
111
gezogen werden können (BATH & VAN WYK, 2009). Bei milchliefernden Tieren kann
auch die Milchleistung heran gezogen werden (HOSTE et al., 2002 a; HOSTE et al.,
2002 b)
5.1.1.2 BCS
Der Body Condition Score hat den Vorteil schnell und einfach sowie ohne Hilfsmittel
ermittelbar zu sein. Er ist somit sehr kostengünstig (MOLENTO et al., 2011).
In der hier durchgeführten Studie liegt der Korrelationskoeffizient bei der
Korrelationsanalyse von BCS zu sowohl den täglichen Zunahmen als auch den
MDS- und Strongyloides-Eizahlen lediglich bei Gruppe III (TST♂) in Bereichen von
± 0,3-0,4, das heißt in Größenordnungen in denen ein Zusammenhang erkennbar ist.
Bei den anderen Gruppen, sowie allen Gruppen zusammen genommen, liegt der
Korrelationskoeffizient näher an Null. Das heißt, ein Zusammenhang zwischen
beiden Parametern ist nur relativ gering und äußert sich nur bei hohen Tierzahlen
und hohen Differenzen zwischen den einzelnen Tieren.
Im Vergleich zum Dag- und zum FAMACHA-Score korreliert der BCS jedoch am
stärksten mit den täglichen Zunahmen. Darum scheint der BCS noch am besten
geeignet zu sein, die täglichen Zunahmen zu ersetzen.
Ein großer Nachteil des BCS ist, dass er nicht spezifisch für endoparasitäre
Infektionen ist (MOLENTO et al., 2011), sondern auch durch vielerlei andere
Faktoren beeinflusst werden kann. Über den Zusammenhang zwischen BCS und
Parasitenbelastung findet man unterschiedliche Meinungen. OUZIR et al. (2011)
schließt den Body Condition Score als Kriterium aus, um Tiere mit hoher Wurmbürde
zu identifizieren. Laut LEATHWICK et al. (2006) scheint der BCS jedoch Tiere mit
hohem Parasitendruck zu erkennen.
Diskussion
112
5.1.1.3 FAMACHA
Der FAMACHA-Score hat sich in Ländern mit MDS-Populationen, hauptsächlich aus
Haemonchus bestehend, wie zum Beispiel Südafrika oder dem Süden der USA, als
sehr guter Indikator bewiesen (VAN WYK & BATH, 2002; KAPLAN et al., 2004). Er
ist simpel in der Anwendung und kann mithilfe von Karten, auf denen die
Farbabstufungen aufgedruckt sind, auch durch Laien angewendet werden (VAN
WYK & BATH, 2002; (KOOPMANN et al., 2006). In Deutschland herrschen jedoch
Mischinfektionen mehrerer Nematodengattungen vor, sodass der FAMACHA-Score
hier in der Regel nicht als alleiniger TST-Indikator geeignet ist (KOOPMANN et al.,
2006).
Der FAMACHA-Score korrelierte in der durchgeführten Studie lediglich bei Gruppe III
(TST♂) und IV (Total♂) mit der MDS-EpG mit Korrelationskoeffizienten von 0,36
bzw. 0,4. Bei den weiblichen Gruppen bestand kein signifikanter Zusammenhang
zwischen diesen beiden Parametern. Über alle Gruppen betrug der
Korrelationskoeffizient 0,21. Dies spricht an sich nicht für eine deutliche Korrelation,
im Vergleich zur Korrelation zwischen BCS- und des Dag-Score und den EpGs ist
die des FAMACHA jedoch am stärksten. Dies lässt darauf schließen, dass im
durchgeführten Versuch Haemonchus contortus eine erhebliche Rolle am
parasitologischen Geschehen hatte. In den parasitologischen Sektionen zeigten
zumindest mehrere Einzeltiere sehr hohe Haemonchus-Anteile. Auch OUZIR et al.
(2011) konnte bei Vorhandensein von Haemonchus in der Population eine
Korrelation zwischen EpG und FAMACHA-Score nachweisen. KOOPMANN et al.
(2006) konnten jedoch bei der für hiesige Breiten eher typischen Mischpopulation mit
geringen Haemonchus-Anteilen keine deutliche Korrelation von FAMACHA-Score
und MDS-EpG feststellen.
Bei Betrachtung dieser Ergebnisse stellt sich die Frage, warum ausgerechnet die
Bockgruppen so stark unter der Haemonchose litten, während die weiblichen
Gruppen bis zum Versuchsende sehr niedrige FAMACHA-Werte zeigten.
Zwischen FAMACHA-Score und täglichen Zunahmen konnte eine signifikante
negative Korrelation nachgewiesen werden, wobei die Korrelationskoeffizienten bei
den männlichen Gruppen am größten waren. Hierdurch wird erneut die Bedeutung
Diskussion
113
unterstrichen, die Haemonchus contortus bei den männlichen Gruppen am klinischen
Geschehen hatte.
5.1.1.4 Dag
Bezüglich des Dag Scores zeigt sich in den ausgewerteten Daten ein ähnliches Bild
wie beim BCS. Lediglich bei Gruppe III (TST♂) kann eine deutliche Korrelation zu
den täglichen Zunahmen, der MDS- und Strongyloides-Eizahl nachgewiesen werden.
Da der Korrelationskoeffizient bei der Korrelation des Dag-Score mit der
Strongyloides-EpG mit 0,508 höher ist als der der Korrelation zur MDS-EpG
(Korrelationskoeffizient 0,395), ist davon auszugehen, dass sowohl Magen-Darm-
Strongyliden als auch Zwergfadenwürmer an dem Durchfallgeschehen beteiligt
waren. Dabei hatte Strongyloides offenbar einen stärkeren Einfluss. Bei den anderen
Gruppen bestehen kaum signifikante Zusammenhänge zwischen Dag-Score und den
täglichen Zunahmen bzw. den EpGs. Ein Zusammenhang zwischen der EpG und der
Kotkonsistenz konnte von OUZIR et al. (2011) und BROUGHAN & WALL (2007)
festgestellt werden.
Obwohl der Dag-Score nicht spezifisch für eine Endoparasitose ist (BESIER, 2008),
sondern durch weitere Faktoren wie zum Beispiel die Zeit seit der letzten
anthelmintischen Behandlung oder das Gewicht (BROUGHAN & WALL, 2007), sowie
durch andere Erkrankungen (Viren, Bakterien, Fütterungsfehler, Organerkrankungen
etc.) (GANTER, 2009) beeinflusst werden kann, ist bei Lämmern unter einem Alter
von 6 Monaten ein Befall mit Magen-Darm-Strongyliden der häufigste Grund für eine
Erhöhung des Dag-Scores. Dies gilt vor allem im Hoch- und Spätsommer
(BROUGHAN & WALL, 2007).
5.1.1.5 EpG
Die Eizählung nach McMaster aus Einzeltierkotproben ist aus wissenschaftlicher
Sicht ein sehr guter TST-Indikator, da hiermit ganz genau die Tiere mit der höchsten
Eiausscheidung und somit mit der höchsten Wurmbürde ermittelt werden können.
Diskussion
114
Das ist zumindest bei Magen-Darm-Strongyliden der Fall (MCKENNA, 1987;
CABARET & GASNIER, 1998). Die Eignung als Indikator zeigte sich in der
durchgeführten Studie durch die vorhandene Korrelation der täglichen Zunahmen mit
der MDS- und vor allem der Strongyloides-EpG. Aus wirtschaftlicher Sicht ist dieses
Verfahren jedoch nicht sehr praktikabel. Die Entnahme von Einzeltierkotproben ist
sehr zeitintensiv. Dazu kommen hohe Laborkosten, die für die Probenuntersuchung
bei Anwendung in der Praxis anfallen würden. Zudem müssen die Tiere nach
Entnahme und Untersuchung der Kotproben zur Behandlung ein zweites Mal
gefangen werden, was wiederum einen erhöhten Arbeitsaufwand darstellen würde.
Diese Nachteile wurden bereits von GALLIDIS et al. (2009) und KENYON et al.
(2009) aufgezeigt und bestätigten sich anhand eigener Erfahrungen aus der
durchgeführten Studie.
Man kann zusammenfassen, dass die täglichen Zunahmen im Vergleich zu den
klinischen Scores am deutlichsten zu den EpGs, sowohl von Magen-Darm-
Strongyliden als auch von Strongyloides papillosus, korrelieren. Demnach scheint
dies der am besten geeignete Parameter zu sein, um die Tiere mit den höchsten
Wurmbürden zu identifizieren. Gleichzeitig werden diejenigen Tiere für die
Behandlung ausgewählt, die Leistungsschwächen durch den Parasitenbefall zeigen.
Dies hat allerdings im durchgeführten Versuch nicht uneingeschränkt funktioniert. Die
Tiere mit den geringsten täglichen Zunahmen waren zwar häufig Tiere mit hohen
EpGs. Vereinzelt jedoch wurden Tiere mit geringen EpGs (unter 500) behandelt,
während Tiere mit über 500 oder gar 1000 Eiern pro Gramm Kot unbehandelt
blieben. Dies war vor allem im August der Fall.
Es ist allerdings zu bezweifeln, dass, abgesehen von der Ermittlung der EpG, ein
Score dazu in der Lage ist, sicher sämtliche Tiere mit einer hohen Wurmbürde zu
identifizieren. Man muss jedoch bedenken, dass dies nicht das primäre Ziel des TST
ist. Das primäre Ziel liegt vielmehr darin, diejenigen Tiere zu identifizieren, die unter
der Wurmbürde leiden (KENYON et al., 2009). Sollte also ein Tier trotz hoher EpG
bzw. Wurmbürde gute Leistungsparameter, wie beispielsweise tägliche Zunahmen,
zeigen, ist das Tier im Sinne des TST ohnehin nicht behandlungswürdig
Diskussion
115
(STAFFORD et al., 2009).
Die im Versuch nachgewiesene Korrelation zwischen der MDS-EpG und dem
FAMACHA Score lässt sich auf den vermehrten Anteil von Haemonchus an der
Parasitenpopulation, vor allem bei den männlichen Gruppen, zurückführen.
5.1.1.6 Weitere Auswahlmöglichkeiten
Ein Hauptanteil von Haemonchus an der Parasitenpopulation, wie im Versuch vor
allem bei den männlichen Gruppen, ist in unseren Breiten eine eher ungewöhnliche
Situation. Vielmehr hat man es hierzulande eher mit Mischpopulationen unbekannter
Zusammensetzung zu tun.
Unter diesem Gesichtspunkt sollte eher eine Kombination von klinischen Scores, wie
beispielsweise dem Five Point Check© (BATH & VAN WYK, 2009) als
Selektionskriterium verwendet werden. Hierbei wird die Gefahr verringert, Anzeichen
einer Endoparasitose durch die Betrachtung ausschließlich eines Parameters zu
übersehen, indem das gesamte Tier auf klinische Anzeichen eines Parasitenbefalls
überprüft wird.
Ebenfalls eine gute Selektionsmöglichkeit scheint der sogenannte Happy Factor zu
sein (GREER et al., 2009; BUSIN et al., 2013; KENYON et al., 2013), bei dem der
Einfluss der Ernährung auf die täglichen Zunahmen berücksichtigt wird, was den
Parameter der täglichen Zunahmen in Bezug auf das Vorliegen einer Endoparasitose
spezifischer macht.
5.1.2 Auswahl des Anthelmintikums und Resistenzproblematik
Für die durchgeführte Studie wurde Fenbendazol als Anthelmintikum ausgewählt. Da
dieser Wirkstoff seit mehr als acht Jahren nicht mehr auf dem Betrieb eingesetzt
worden war, schien er für den Versuch geeignet zu sein.
Im Verlauf des Versuches erkrankte zunächst die männliche TST-Gruppe (Gruppe
III) im Juli, etwas später ab August Gruppe IV (Total♂) an Diarrhoe und vor allem
Gruppe III (TST♂) zeigte gleichzeitig eine deutliche Gewichtsabnahme. Drei Tiere
Diskussion
116
verstarben in Folge dessen; vier Tiere mussten aus dem Versuch genommen und
aufgestallt werden. Aus Gruppe IV (Total♂) verstarben sechs Tiere. Die Ursache
hierfür war eine Strongyloidose in Kombination mit einer Haemonchose, wie sich
durch die klinischen Symptome in Verbindung mit extrem hohen EpGs zeigte. Im
August zeigten in beiden männlichen Gruppen die Tiere deutlich erhöhte FAMACHA-
Scores, d.h. anämische Lidbindehäute. Vereinzelt verstarben Tiere an den Folgen
der Anämie. Der Verdacht des Vorliegens einer Haemonchose wurde durch die
Sektion von zwei Lämmern durch makroskopisch hochgradig anämische Organe und
Gewebe und massenhaftem Nachweis von Haemonchus contortus im Labmagen
bestätigt. Da sowohl die TST-als auch die alle vier Wochen behandelte
Kontrollgruppe so deutlich erkrankten, entstand der Verdacht auf das Vorliegen einer
Resistenz von Haemonchous contortus und anderer Magen-Darm-Strongyliden
gegenüber Fenbendazol. Eine Resistenz wurde durch mehrere Eizahlreduktionstests
bestätigt. Bei sämtlichen untersuchten Probenpaaren betrug die Eizahlreduktion
nach Fenbendazolbehandlung in der Dosis 5 mg/kg nicht mehr als 35%, was eine
hochgradige Resistenz anzeigt.
Nach dem Nachweis der Anthelmintikaresistenz gegen Fenbendazol wurden Anfang
September auf mündlichen Vorschlag von Frau Prof. Dr. Janina Demeler aus dem
Institut für Parasitologie der FU Berlin sämtliche Tiere, d.h. auch alle der TST-
Gruppen, beider Geschlechter mit 40 mg/kg Fenbendazol behandelt. Ein danach
durchgeführter Eizahlreduktionstest zeigte, dass auch diese hohe Fenbendazol-
Dosis nicht ausreichend wirksam gegenüber MDS noch gegenüber Strongyloides
papillosus war. Bei keiner Gruppe konnte die Eizahl um mehr als 81% reduziert
werden.
Als Konsequenz wurden die männlichen Gruppen, die beide klinisch an
Endoparasitosen erkrankt waren, aus dem Versuch genommen, aufgestallt und alle
mit Levamisol in der Dosierung 8 mg/kg behandelt. Da die weiblichen Gruppen noch
keine Krankheitssymptome zeigten und wesentlich niedrigere EpGs im Vergleich zu
den männlichen Gruppen aufwiesen, wurde mit ihnen der Versuch nach Plan
fortgeführt. Die Behandlung der männlichen Lämmer mit Levamisol hatte eine
Diskussion
117
Reduktion der MDS-EpG um 99% und der Strongyloides-EpG um 33% zur Folge.
Die geringe Eizahlreduktion bei den Strongyloides-Eiern blieb hier ohne
Konsequenzen, da die Tiere im Stall aufgefüttert wurden und nach Ablauf der
Wartezeit durch die Levamisolbehandlung außerhalb des Versuches geschlachtet
wurden. Bei den weiblichen Gruppen betrug die Eizahlreduktion nach der
Levamisolbehandlung nach Aufstallung 99% bei den MDS-Eiern und 96% bei den
Strongyloides-Eiern. Bemerkenswert ist hier der deutliche Unterschied in der
Eizahlreduktion der Strongyloides-Eier zwischen den Geschlechtern.
Dass sich vor Jahren auf dem Betrieb eine solch ausgeprägte Resistenz entwickelt
hatte war im Vorfeld nicht bekannt. Die Tatsache, dass sich eine Resistenz in der
Strongylidenpopulation über mehrere Jahre nachdem das entsprechende
Anthelmintikum zuletzt eingesetzt wurde hält, zeigten PALCY et al. (2010) an
Benzimidazol-resistenten Trichostrongylus axei. Wäre das Vorhandensein der
Anthelmintikaresistenz im Vorfeld bekannt gewesen, hätte ein anderer Wirkstoff
verwendet werden müssen.
Durch das TST konnten die Anzahl der Behandlungen sowie die Menge der
eingesetzten Anthelmintika um 80-85% reduziert werden.
5.1.2.1 Eizahlreduktionstests: Vergleich TST-Total
Trotz der generell vorhandenen Fenbendazolresistenz lässt sich ein interessanter
Unterschied ausmachen. Bei dem Eizahlreduktionstest Anfang September nach der
Behandlung mit 40mg/kg Fenbendazol betrug die EZR bei Gruppe III (TST♂) 81%,
während sie sich bei Gruppe IV (Total♂) auf nur 28% belief. Bei den weiblichen
Gruppen zeigte sich ein ähnliches Bild. Hier betrug die EZR bei Gruppe I (TST♀)
71%, die bei Gruppe II (Total♀) nur 50%.
Das zeigt, dass die Anwendung des TST eine Resistenzselektion verlangsamt. Diese
Feststellung wurde ebenfalls bereits in Versuchen von GABA et al. (2010),
WAGHORN et al. (2008) und KENYON et al. (2013) getroffen. Die insgesamt
Diskussion
118
reduzierte Wirksamkeit von Fenbendazol auf diesem Betrieb, auch bei den TST-
Gruppen, resultiert jedoch nicht aus den Behandlungen des Versuches im Jahr 2012.
Sicherlich war die Resistenz schon zu Beginn der Versuchsperiode in großem Maße
auf dem Betrieb vorhanden. Allerdings wurde die Resistenz in den Gruppen, in
denen alle Lämmer behandelt wurden, noch verstärkt.
5.2 Verlauf und Gruppenvergleich der während der Weideperiode erhobenen
Parameter
Die MDS-Eizahlen bewegten sich zunächst auf einem niedrigen Niveau bei
durchschnittlich unter 500 Eiern pro Gramm Kot. Ab August stieg die Eizahl bei allen
Gruppen an, vor allem bei den männlichen Gruppen.
Vermutlich schaukelte sich die anfangs moderate Wurmbürde durch Anthelmintika-
Resistenz und für die Larvenentwicklung günstige Witterung ab Mitte Juli auf, sodass
es im August zu einem deutlichen Anstieg der MDS-EpG kam.
Die Eizahlen gingen erst nach der Fenbendazolbehandlung mit 40 mg/kg moderat,
nach der Levamisolbehandlung der männlichen Tiere Ende September deutlich
zurück. Dies weist auf das Vorliegen einer Benzimidazol-Resistenz hin, was durch
die durchgeführten Eizahlreduktionstests bestätigt werden konnte. Hierbei wurden
mit Fenbendazol 40 mg/kg zwar im Schnitt höhere Eizahlreduktionen erreicht als mit
5 mg/kg, jedoch konnte nur Levamisol die MDS-Eizahlen um mehr als 95%
reduzieren. Es lag demnach eine vollständige Fenbendazolresistenz der Magen-
Darm-Strongyliden sowie von Strongyloides papillosus vor.
Die männlichen Tiere waren deutlich stärker befallen als die weiblichen, obwohl die
Weiden der Gruppen unmittelbar nebeneinander lagen.
Als Begründung hierfür könnte man nennen, dass die männlichen Tiere anfangs
höhere tägliche Zunahmen aufwiesen, was mit einer erhöhten Futteraufnahme und
somit mit einer Aufnahme von mehr infektiösen Larven pro Zeiteinheit einherging.
Zwar war statistisch gesehen der Unterschied der MDS-EpG zwischen der
Diskussion
119
männlichen TST- und Kontrollgruppe signifikant, jedoch verliefen die Kurven in der
Grafik weitgehend parallel.
Vergleichbar zum Verlauf der MDS-Eizahl war bei den männlichen Gruppen der
Verlauf der FAMACHA-Scores. Zunächst waren die Werte mit durchschnittlich
maximal 2,4 auf einem noch akzeptablen Niveau. Anfang September wiesen beide
männliche Gruppen mit durchschnittlich 3,5 deutlich schlechtere Werte auf.
Hier lässt sich ein Zusammenhang zwischen MDS-EpG und FAMACHA-Score
herstellen. Nach dem deutlichen Anstieg der MDS-EpG stieg zeitlich leicht versetzt
der FAMACHA-Score an. Dieser Zusammenhang zeigte sich auch in der
durchgeführten Korrelationsanalyse, in der zwischen dem FAMACHA-Score und der
MDS-EpG ein signifikanter Zusammenhang darstellbar ist. Hierbei war bei den
männlichen Gruppen der Korrelationskoeffizient am höchsten. Bei den weiblichen
Tieren bestand dieser signifikante Zusammenhang nicht. Dies spricht für das
Vorliegen einer Haemonchose vor allem bei den männlichen Gruppen. Die
durchschnittlichen Haemonchus-Anteile in der parasitologischen Sektion waren zwar
bei den männlichen Gruppen niedriger als bei den weiblichen Gruppen. Doch auch
bei den männlichen Gruppen wiesen Einzeltiere hohe Gehalte an Haemonchus auf.
Zudem muss bedacht werden, dass aus den männlichen Gruppen stets die
schwersten Tiere der Gruppe zur Schlachtung gelangten, also tendenziell die
gesündesten. Die Tiere mit den sehr hohen Haemonchusbürden waren vermutlich
die, die entweder verstorben waren und nicht in die Sektion gelangten oder
kümmerten und am Ende des Versuches aufgestallt wurden. Aufgrund dessen kann
als sicher angenommen werden, dass der tatsächliche Anteil an Haemonchus-
Infestationen in den männlichen Gruppen höher lag, als in der Untersuchung
festgestellt.
Bei den weiblichen Gruppen lagen die FAMACHA-Werte über den gesamten
Versuchszeitraum hinweg auf einem sehr niedrigen Niveau. Dies lässt zunächst
vermuten, dass die weiblichen Tiere keinen oder nur einen sehr geringen
Haemonchusbefall aufwiesen. Betrachtet man aber das Ergebnis der
parasitologischen Sektionen der weiblichen Gruppen, findet man vor allem bei
Diskussion
120
Gruppe II (Total♀) relativ hohe Anteile an Haemonchus. Bei den weiblichen Gruppen
wurden zum Versuchsende zwar Tiere zur Schlachtung heraus gesucht, die das
Schlachtgewicht erreicht hatten. Jedoch waren dies nicht die schwersten und am
besten entwickelten Tiere der Gruppe. Letztere verblieben als künftige Zuchttiere im
Bestand. Dadurch entstand ein unverfälschteres Bild über die tatsächliche
Zusammensetzung der Endoparasitenpopulation der entsprechenden Gruppen. Die
höheren Haemonchusanteile bei den weiblichen Gruppen, lassen darauf schließen,
dass diese beiden Gruppen im Vergleich zu den männlichen Gruppen verzögert an
einer Haemonchose litten bzw. gelitten hätten, wären sie nicht vorher aufgestallt und
mit Levamisol behandelt worden. Wären die weiblichen Tiere noch eine Zeit lang auf
der Weide verblieben, hätte sich vermutlich ein ähnliches klinisches Bild ergeben wie
zuvor bei den männlichen Tieren.
Die Strongyloides-EpGs zeigten wie die MDS-EpG nach anfänglich moderatem
Verlauf einen Anstieg, allerdings bereits ab Mitte Juli.
Auch hier waren die männlichen Gruppen mit Maximalwerten von 4000-8000 Eiern
pro Gramm Kot deutlich stärker betroffen als die weiblichen. Als Ursache hierfür lässt
sich das Gleiche vermuten wie die für den Geschlechtsunterschied in der MDS-EpG.
Die männlichen Tiere nehmen aufgrund der höheren Futteraufnahme vermehrt
infektiöse Larven auf. Aufgrund der Struktur, Lage, Vegetation und Größe der
Weiden bestanden keine offensichtlichen Unterschiede zwischen den Gruppen.
Zwischen der weiblichen TST- und Kontrollgruppe bestand kein signifikanter
Unterschied bei der Strongyloides-EpG. Bei den männlichen Tieren wies die TST-
Gruppe signifikant höhere Strongyloides-Eizahlen auf als die Kontrollgruppe, was für
eine gewisse Wirksamkeit von Fenbendazol gegenüber Strongyloides papillosus
spricht.
Zeitgleich zum Anstieg der Strongyloides Eizahlen in Gruppe III (TST♂),
verschlechterten sich bei dieser Gruppe die BCS- und Dag-Scores deutlich. Für
diese Gruppe konnte eine signifikante Korrelation zwischen BCS bzw. Dag-Score mit
der MDS- und Strongyloides-EpG gezeigt werden. Dieser Zusammenhang liefert
Diskussion
121
einen deutlichen Hinweis auf das Vorliegen einer klinisch manifesten Strongyloidose
in Gruppe III (TST♂).
Es stellt sich die Frage, ob der gleichzeitige Befall mit Haemonchus und
Strongyloides eine Ausprägung der klinischen Symptome, vor allem einer
Strongyloidose, verstärkt. Der statistische Zusammenhang zwischen den täglichen
Zunahmen und den EpGs, vor allem denen von Strongyloides, sowie der Korrelation
von FAMACHA-Score und MDS-EpG sprechen dafür, dass die Kombination aus
Strongyloides papillosus und Haemonchus contortus hoch pathogen ist. Dies wird
untermauert durch die Tatsache, dass die Korrelationen bei gruppengetrennter
Betrachtung bei den erkrankten Gruppen III (TST♂) IV (Total♂) noch ausgeprägter
sind, als wenn alle Lämmer gemeinsam betrachtet werden.
Zusätzlich trug die verheerende Resistenzsituation zum drastischen klinischen
Verlauf, vor allem in Gruppe III (TST♂), bei.
Daraus ist zu fordern, dass vor der Anwendung eines Targeted Selective Treatments
ein Resistenztest anzufertigen ist und nur bei ausreichender Wirksamkeit der
Anthelmintika ein Teil der Lämmer unbehandelt bleiben kann.
5.2.1 Tägliche Zunahmen und Gewichte
Sowohl bei den täglichen Zunahmen als auch bei den Gewichten bestand kein
signifikanter Unterschied zwischen der weiblichen TST- und Kontrollgruppe.
Die männliche TST-Gruppe zeigte bereits ab Mai abnehmende Tageszunahmen. Ab
August nahm diese Gruppe im Durchschnitt ab. Zum gleichen Zeitpunkt
verschlechterten sich auch die Dag- und BCS-Scores dieser Gruppe. Hier ist ein
deutlicher zeitlicher Zusammenhang zur Zunahme der MDS- und vor allem
Strongyloides-EpG ersichtlich.
Bei der männlichen Kontrollgruppe blieben die Tageszunahmen zunächst positiv
bevor die Gewichte im August stagnierten. Lediglich im September vor Abbruch des
Versuches mit den männlichen Tieren nahmen die Bocklämmer im Durchschnitt ab,
Diskussion
122
wodurch das mittlere Gewicht der Gruppe sank. Bei Betrachtung der Kurve des
Gewichtsverlaufes muss bedacht werden, dass zwischen t8 und t9 (Mitte August)
und zwischen t10 und t11 (Mitte September) jeweils die schwersten Tiere aus
Gruppe III (TST♂) und IV (Total♂) geschlachtet wurde. Die Abnahme des mittleren
Gewichtes von Gruppe IV (Total♂) ab t10 war jedoch sicherlich auch auf die
Gewichtsabnahme zurückzuführen. Bei Gruppe III (TST♂) hatten die negativen
täglichen Zunahmen maßgeblichen Einfluss auf die Gewichtsentwicklung. Bei dieser
Gruppe war die fallende Tendenz der Gewichte bereits vor der ersten Schlachtung
bemerkbar.
Während man bei Betrachtung der Ergebnisse der männlichen Gruppen den
Eindruck bekommt, dass das TST versagt hatte, konnte zwischen den weiblichen
Gruppen kein signifikanter Unterschied der Gewichte und Tageszunahmen
beobachtet werden. Hier führte das TST trotz MDS- und Strongyloides-Befall zu
gleichen Zunahmen wie in der Gruppe, in der alle Lämmer mit dem nicht ausreichend
wirksamen Anthelmintikum behandelt wurden.
Auffallend ist, dass bei den weiblichen Gruppen die MDS-EpG stärker mit den
täglichen Zunahmen korrelierte als die Strongyloides-EpG. Bei den männlichen
Tieren war dies genau umgekehrt der Fall; wobei in allen Fällen, sowohl bei den
weiblichen als auch bei den männlichen Gruppen, eine signifikante Korrelation
zwischen den Tageszunahmen und der MDS-bzw. Strongyloides-EpG bestand.
Demnach scheinen sowohl MDS als auch Strongyloides einen deutlichen Einfluss
auf die Tageszunahmen nehmen, jedoch ist im Falle einer vorliegenden
Strongyloidose der Einfluss von Strongyloides auf die Tageszunahmen größer.
5.3 Differenzierung der Nematoden
In den Labmägen von Gruppe I (TST♀), III (TST♂) und IV (Total♂) war Teladorsagia
die vorherrschende Gattung. Haemonchus dominierte in den Labmägen von Gruppe
II (Total♀). In den Dünndärmen war Strongyloides bei allen Gruppen die prozentual
meist vertretene Nematodengattung.
Diskussion
123
Die Dickdarmnematoden spielten in der Studie eine eher untergeordnete Rolle, da
nur vereinzelte Exemplare bei der parasitologischen Sektion gefunden wurden. In
diesem Darmsegment konnte Oesophagostomum am häufigsten nachgewiesen
werden.
Bei der Auswertung der Differenzierung ohne Trennung nach Darmabschnitten
machte in Gruppe I (TST♀) Strongyloides den größten Prozentsatz aus. In Gruppe II
(Total♀) dominierten Haemonchus und Strongyloides zu etwa gleichen Teilen.
Sowohl bei Gruppe III (TST♂) als auch bei Gruppe IV (Total♂) kam insgesamt
Teladorsagia mit Abstand am meisten vor (jeweils knapp 30%). Strongyloides
machte bei beiden männlichen Gruppen knapp 20%, Haemonchus bei Gruppe IV
(Total♂) noch rund 10% aus.
Diese Verteilung überrascht zunächst, da sie nicht mit dem klinischen Bild bzw. der
erhobenen klinischen Parameter sowie den gezählten EpGs übereinstimmen, nach
denen die männlichen Gruppen an Haemonchose und Strongyloidose litten. Man
muss jedoch berücksichtigen, dass jeweils nur die schwersten Tiere der Gruppen
geschlachtet wurden, also diejenigen, die am besten mit der Wurmbürde klar kamen
bzw. diejenigen, deren Wurmbürden am geringsten waren. Die am schwersten
erkrankten Tiere, d.h. die mit hoher Wurminfestation, wurden nach Abbruch des
Versuches mit den männlichen Gruppen aufgestallt und mit Levamisol behandelt. Sie
gelangten im Rahmen des Versuches also nicht zur Schlachtung bzw. in die
parasitologische Sektion. Ausnahmen bilden hier Einzeltiere, bei denen Haemonchus
oder Strongyloides dominierten, sowie ein verendetes Tier, welches postmortal
parasitologisch untersucht wurde. Dieses verendete Tier stammte aus Gruppe IV
(Total♂), bei ihm wurde Haemonchus zu 50% nachgewiesen. Es zeigte
entsprechende klinische Symptome in Form von hochgradig anämischen Organen
und Geweben sowie multiplen Ergüssen in allen Körperhöhlen.
Bei der Interpretation der Daten aus den parasitologischen Sektionen im
Zusammenhang mit den klinischen Erscheinungen bzw. den erhobenen Daten an
den Tieren während der Weideperiode muss man berücksichtigen, dass während der
Versuchsphase fast nur die gesündesten Tiere der Herde zur Schlachtung
gelangten. Sicherlich interessanter und aussagekräftiger wäre die Sektion auch der
Diskussion
124
erkrankten Tiere gewesen, um ein unverfälschtes Gesamtbild zu erhalten. Dies war
jedoch nicht möglich, da es sich um den regulären Mastlämmerdurchgang des
Betriebes handelte, aus dem die Tiere normal zur Schlachtung und Vermarktung
gelangen sollten.
5.4 Schlussfolgerung
Ziel des durchgeführten Versuches war, das Targeted Selective Treatment
hinsichtlich Praktikabilität und Effektivität unter niedersächsischen Bedingungen zu
erproben.
Die Durchführung des TST auf Grundlage der täglichen Zunahmen hat aus
betrieblicher Sicht Vor- und Nachteile. Die täglichen Zunahmen können dem Schäfer
über das Entwurmungsmanagement hinaus wertvolle Informationen zum
Leistungsstand der Herde liefern. Zudem lässt sich in diesem Zusammenhang die
ohnehin verpflichtende elektronische Einzeltierkennzeichnung zur schnellen
Tiererkennung und Datenaufzeichnung sehr gut nutzen.
Nachteilig sind die Anschaffungskosten der Gerätschaften, sowie der zeitliche
Mehraufwand der dadurch entsteht, dass zunächst alle Tiere gewogen werden
müssen bevor eine Auswahl der Tiere für die Behandlung erfolgen kann. Letzteres
ließe sich jedoch optimieren, indem man die täglichen Zunahmen eines einzelnen
Tieres nicht mit der restlichen Gruppe vergleicht, sondern einen erwarteten
Grenzwert als Orientierung für die Behandlungsentscheidung zur Hand nimmt. Dies
wird z.B. beim Happy factor™ durchgeführt (GREER et al., 2009; BUSIN et al., 2013;
KENYON et al., 2013).
Durch die täglichen Zunahmen lassen sich die Tiere mit der höchsten Wurmbürde
am zuverlässigsten identifizieren.
Der Indikator der täglichen Zunahmen lässt sich von denen im Versuch getesteten
Indikatoren höchstens durch den BCS ersetzen. Jedoch können Leistungseinbußen
durch die täglichen Zunahmen und damit die Tiere, die gemäß des Prinzips des TST
behandlungswürdig sind, genauer ermittelt werden.
Diskussion
125
Die im Versuchsverlauf entdeckte vollständige Fenbendazolresistenz der Magen-
Darm-Strongyliden- und Strongyloides papillosus-Population auf dem
Versuchsbetrieb in Verbindung mit dem Verlauf der klinischen Symptomatik und den
Eizahlen, vor allem bei der männlichen TST-Gruppe, haben gezeigt, dass das TST
bei bereits vorhandener Anthelmintika-Resistenz nicht greift. Die Anwendung des
TST sollte demnach in solch einem Fall unterlassen werden bzw. nur mit einem
wirksamen Präparat durchgeführt werden. Die Wirksamkeit des zu vernwendenden
Anthelmintikums sollte im Vorfeld vor der Anwendung des TST-Prinzips durch
Resistenztests überprüft werden.
In der durchgeführten Studie ergab sich die besondere Situation einer vorliegenden
Haemonchose zusätzlich zu einer Strongyloidose. Der fatale Krankheitsverlauf der
männlichen Gruppen mit hochgradiger Diarrhoe, massiven Mastleistungeinbußen
und zum Teil plötzlichen Todesfällen hat gezeigt, dass der hochgradige Befall mit
den Gattungen Haemonchus und Strongyloides hoch pathogen ist.
Diese besonderen Gegebenheiten bei dem Versuch lassen noch keine exakte
Beantwortung der Fragestellung der Studie hinsichtlich der Wirtschaftlichkeit des
TST zu. Zwar ergaben sich bei der weiblichen TST-Gruppe keine Nachteile
gegenüber der weiblichen Kontrollgruppe, denn die Gewichtsentwicklung und
täglichen Zunahmen beider Gruppen war vergleichbar. Jedoch muss auch hier das
Vorliegen der hochgradigen Fenbendazolresistenz berücksichtigt werden.
Letztendlich sind zu der Fragestellung weitere Studien nötig, vor allem sollte der
Versuch mit einem wirksamen Präparat wiederholt werden um hinsichtlich der
Wirtschaftlichkeit des TST aussagekräftigere Ergebnisse zu erhalten.
Zusammenfassung
126
6 Zusammenfassung
Caroline Trapp (2014):
Erprobung des ‚Targeted Selective Treatment‘ zur Endoparasitenbekämpfung
bei Lämmern
Weltweit bereiten Anthemintikaresistenzen der Endoparasiten der Schafhaltung
große Probleme. Da man sich aufgrund dessen nicht mehr nur auf eine strategische
Parasitenbekämpfung stützen kann, benötigt es neue Ansätze. Solch ein Ansatz ist
das sogenannte ‚Targeted Selective Treatment‘ (TST), bei dem nur ein Teil der
Herde behandelt wird und den Endoparasiten dadurch ein Refugium in
unbehandelten Tieren geschaffen wird, in dem sie keinem Selektionsdruck durch
Anthelmintika ausgesetzt sind. Dies soll die Resistenzselektion verlangsamen.
Ziel des durchgeführten Versuches war es, das TST unter niedersächsischen
Bedingungen hinsichtlich seiner Praktikabilität und Effektivität zu testen.
Die 182 Schwarzköpfigen Fleischschaflämmer einer Herde wurden nach dem
Absetzen von den Muttertieren noch im Stall in 4 Gruppen mit gleichen
Durchschnittsgewichten geteilt. Die Bocklämmer wurde in eine behandelte
Kontrollgruppe (alle Lämmer behandelt) und in eine TST Gruppe geteilt. In der TST-
Gruppe wurden nur diejenigen 25% der Lämmer behandelt, die in den vergangenen
vier Wochen die schlechtesten täglichen Zunahmen gezeigt hatten. Entsprechend
wurden die weiblichen Lämmer in eine behandelte Kontrollgruppe und in eine TST-
Gruppe unterteilt. Die Behandlungen wurden in allen Gruppen mit 5 mg Fenbendazol
(Panacur Suspension 2,5%)/kg KGW oral durchgeführt. Jeder Behandlungsgruppe
wurden zwei Koppeln mit je einem Hektar Fläche zugeteilt, auf die sie alle vier
Wochen im Wechsel umgetrieben wurden. Beginnend mit dem Austrieb wurden die
Lämmer alle zwei Wochen gewogen, ab vier Wochen nach dem Austrieb wurden alle
vier Wochen die Behandlungen durchgeführt. Bleichzeitig wurden klinische Scores
Zusammenfassung
127
erhoben (BCS, FAMACHA-, Dag-Score). Beim Wiegen wurden von jedem Lamm
Kotproben entnommen, die parasitologisch mittels Flotationsmethode nach
McMaster untersucht wurden.
Bei den Bocklämmern der TST-Gruppe stagnierten die Gewichte ab Mitte Juli bei 39
kg und in der Folge nahmen diese bis Ende August noch bis zu einem
Durchschnittsgewicht von 34,2 kg deutlich ab. Zwei Bocklämmer der TST-Gruppe
starben an einer Haemonchose und Strongyloidose. Dagegen nahmen die
Bocklämmer der behandelten Kontrollgruppe bis Ende Juli bis zu einem
Durchschnittsgewicht von 43 kg kontinuierlich zu. Die Gewichte und die Zunahmen
unterschieden sich ab Mitte Juli signifikant zwischen den beiden Bockgruppen.
Bei den beiden Gruppen der weiblichen Lämmer ergaben sich keine signifikanten
Gewichtsunterschiede
Bereits ab Mitte Juli nahmen die Magen-Darm-Strongyliden (MDS)-Eier pro Gramm
Kot (EpG) bei beiden Bockgruppen signifikant zu, wobei sich bereits zu diesem
Zeitpunkt signifikante Unterschiede zwischen den durchschnittlichen MDS-EpG der
TST Gruppe (256 EpG) und derjenigen der Kontrollgruppe (95 EpG) ergaben. Trotz
Behandlung aller Bocklämmer der Kontrollgruppe in vierwöchigem Rhythmus stiegen
die MDS-EpG bis zum 04.09.2012 auf 2031 EpG an, wobei dieser Wert noch von
den EpG der TST Gruppe (2928 EpG) übertroffen wurde. Bei den weiblichen
Lämmern wurde in beiden Gruppen ebenfalls ein Anstieg der durchschnittlichen EpG
ermittelt, bei diesen überstiegen die durchschnittlichen EpG der Kontrollgruppe mit
1382 EpG diejenigen der TST Gruppe (689 EpG) signifikant.
Die parallel durchgeführten Eizahlreduktionstests ergaben eine Reduktion der Eizahl
nach der Behandlung mit 5 mg Fenbendazol/kg KGW um 5% (0-35%) bzw. um 35%
(0-69%).
Bereits Mitte Juni wurde in allen vier Gruppen die Ausscheidung von Strongyloides-
Eiern beobachtet. Diese Ausscheidung nahm bis zum September kontinuierlich zu
und erreichte am 04.09.12 mit Durchschnittswerten von 2046 bis 8066 Strongyloides
EpG seinen Höhepunkt. Die Behandlungen bis zur achtfachen Fenbendazol-Dosis
Zusammenfassung
128
(40 mg/kg KGW) änderte an der Strongyloides Ausscheidung nichts Wesentliches.
Lediglich die Behandlung mit Levamisol brachte den Anstieg der Strongyloides
Eiausscheidung zum Stoppen.
Die Differenzierung der adulten Würmer im Magen-Darm-Trakt nach der
Normalschlachtung der Tiere ergab bei den TST-Bocklämmern im Labmagen eine
Mischinfektion von Teladorsagia spp. und Haemonchus contortus. Im Dünndarm
dominierten Zwergfadenwürmer neben geringen Mengen an Cooperia, Nematodirus
und Trichostrongylus spp.. Die Dickdärme diese Lämmer waren vor allem von
Oesophagostomum spp. besiedelt.
Eine klare Aussage bezüglich der Wirtschaftlichkeit des TST anhand der
gewonnenen Daten ist, bedingt durch die vorher nicht bekannte
Fenbendazolresistenz, nicht möglich. Bei den weiblichen Gruppen traten keine
wesentlichen Unterschiede in der Gewichtsentwicklung auf. Der markante Einbruch
der Mastleistung der männlichen TST-Gruppe ist vielmehr dem Vorliegen der hoch
pathogenen Kombination aus Haemonchose und Strongyloidose sowie der
Fenbendazolresistenz zuzuschreiben als dem TST. Dies ist auch daran erkennbar,
dass die männliche Kontrollgruppe ebenfalls betroffen war, wenn auch in geringerem
Ausmaß.
Die Ergebnisse der Eizahlreduktionstests deuten darauf hin, dass das TST-Prinzip
dazu geeignet ist die Resistenzbildung zu verlangsamen. Die Eizahlreduktion war
sowohl bei den männlichen als auch bei den weiblichen Gruppen bei den TST-
Gruppen größer als bei den Kontrollgruppen.
Die täglichen Zunahmen erwiesen sich als guter Indikator zur Erkennung
parasitenbelasteter Lämmer. Es konnten hohe Korrelationen der Tageszunahmen
mit den Eiern pro Gramm Kot nachgewiesen werden. Auch die klinischen Scores
korrelierten mit den täglichen Zunahmen, vor allem bei der erkrankten männlichen
TST-Gruppe. Allerdings waren diese Beziehungen deutlich weiter, sodass die
klinischen Scores keine zuverlässige Aussage über die Belastung zulassen. Allein
die Kombination verschiedener Scores könnte deren Aussage verbessern.
Zusammenfassung
129
Grundsätzlich zeigen die Versuche, dass es möglich und sinnvoll ist nur einen Teil
der Gruppe zu behandeln. Die Tatsache, dass auch unter den vorhandenen
Parasitenbesiedelungen ca. 35% der weiblichen Lämmer während der gesamten
Weideperiode nur ein einziges Mal behandelt wurden und trotzdem befriedigende
Zunahmen zeigten, bietet die Möglichkeit das TST-Prinzip mit der genetischen
Selektion auf Parasitenresistenz der Tiere zu kombinieren.
Zur aussagekräftigeren Beantwortung der Fragestellung sollte der Versuch mit
Anwendung eines voll wirksamen Wirkstoffes wiederholt werden.
Summary
130
7 Summary
Caroline Trapp (2014):
Trial of the ‘Targeted Selective Treatment’ for control of endoparasitosis in
lambs
Worldwide there are huge problems in sheep flocks due to anthelmintic resistance of
endoparasites. That is why parasite control cannot be based just on strategic
treatments any longer but further approaches are needed. Such an approach is the
so-called ‘Targeted Selective Treatment’ (TST), where just a proportion of the flock is
treated so there is a refugia in untreated animals, where the parasites are without
selection-pressure due to anthelmintics. This is supposed to slow down the
development of anthelmintic resistance.
The aim of the study was the testing of the TST in terms of efficiency and
practicability in Lower Saxony.
The 182 Blackheaded Mutton lambs of a sheep flock were divided in four groups with
similar average weights after weaning. The male lambs were divided in a treated
control group (all the lambs treated) and a TST group. In the TST group only those
25% of the lambs were treated, which showed the worst daily weight gains in the
past four weeks. Accordning to the male lambs the female lambs also were divided
into a treated control group and a TST group. The treatments in all groups were
performed with 5 mg Fenbendazole (Panacur®-suspension 2.5%)/kg orally. Each
group got two pastures, each sized one hectare, on which they rotated every four
weeks. After beginning of the grazing, every two weeks the lambs were weighted and
every four weeks they were treated. At the same time clinical score values were
collected (Body Condition Score, FAMACHA score, Dag score). At the time of
weighting fecal samples were collected from each lamb. These samples were
analyzed parasitological with the flotation method by McMaster.
Summary
131
The lamb weights of the male TST group stagnated from the mid of July at a level of
39 kg and decreased considerable to 34.2 kg at the end of August. Two male lambs
of the TST group died due to Haemonchosis and Strongyloidosis. The weights of the
male treated control groups increased until the end of July to 43 kg on average. The
weights of the two male groups differed significantly from the mid of July on.
There were no significant differences between the weights of the two female groups.
Already from the mid of July on, the fecal egg counts (FEC) of gastrointestinal
strongylids (MDS) of the two male groups increased significantly. Already at this
date, the MDS-FEC of the two male groups differed significantly with 256 eggs per
gram faeces (EpG) in average in the TST group and 95 EpG in the control group.
Despite treating all lambs of the male control group every four weeks the MDS-EpG
increased to 2031 EpG at the beginning of September. The FEC of the male TST
group at this time was even higher with 2928 EpG. The average FEC of the female
groups increased as well. Those of the control group were significantly higher (1382
EpG in average) than those of the TST group (689 EpG).
At the same time Fecal Egg Count Reduction Tests (FECRT) were performed. They
showed a reduction of the EpG of 5% (0-35%) and 35% (0-69%) after treatment with
Fenbendazole 5 mg/kg.
Already in the mid of June an excretion of Strongyloides-eggs was observed in all
four groups. The excretion increased continuously until the beginning of September
and reached its maximum at September, 4th with 2046 to 8066 EpG in average. The
treatment with Fenbendazole eight times the normal dosage (40 mg/kg) did not
change the excretion of Strongyloides-eggs a lot. Just the treatment with Levamisole
was able to stop the increase of Strongyloides FEC.
The analysis of adult worms in the gastrointestinal tract of lambs after slaughtering
resulted a miscellaneous infection of the abomasum with Teladorsagia spp. and
Haemonchus contortus. In the small intestine the dominant species was
Strongyloides, but also smaller numbers of Cooperia, Nematodirus und
Summary
132
Trichostrongylus spp. The large intestines of the lambs were mainly populated by
Oesophagostomum spp.
A clear conclusion related to efficiency of TST is not possible on the basis of the
collected data from this study because of the previously unknown Fenbendazole-
resistance. The female groups showed no significant differences in weight
development. The massive loss in performance of the male TST-group was caused
more by the highly pathogenic combination of Haemonchosis and Strongyloidosis
and the Fenbendazole-resistance, especially as the male control group also was
affected, but in a smaller extend.
At least the TST seems to slow the development of anthelmintic resistance. In the
fecal reduction tests the reduction of the egg counts was higher in the male and
female TST groups compared with the control groups.
The daily weight gains showed to be a good indicator to find the lambs with high
worm burdens. There were high correlations between the daily weight gains and the
fecal egg counts. Also the clinical scores correlated with the daily weight gains,
especially in the most infected male TST-group. But these correlations were
considerably lower, so that they are not able to give reliable information about the
worm burden. Just the combination of several scores could be able to improve the
information.
Basically the trials show, that it is possible and reasonable to treat just a proportion of
the flock. The fact, that even under the existing worm burden about 35% of the
female lambs were just treated once during the whole grazing season and
nevertheless showed satisfying weight gains, makes it possible to combine the TST-
method with genetic selection for resistance against parasitism of the animals.
To get a more conclusive answer to the question the study should be repeated with a
high effective anthelmintic drug.
Literaturverzeichnis
133
8 Literaturverzeichnis
ABBOTT, K.A., P.M. TAYLOR, L.A. STUBBINGS (2012): Sustainable Control of Parasites in Sheep Sustainable Worm Control Strategies 4th Edition
AUSTRALIAN WOOL INNOVATION & UNIVERSITY OF SYDNEY, (2003): Reso FECRT analysis program v4.0 [Internet: URL: http://sydney.edu.au/vetscience/sheepwormcontrol/software/ (Homepage der Veterinärmedizinischen Fakultät der Universität Sydney), 11.01.2013]
BARGER, I. a, (1999): The role of epidemiological knowledge and grazing management for helminth control in small ruminants. International Journal for Parasitology, 29, 41–47
BARTLEY, D.J., F. JACKSON, E. JACKSON, N. SARGISON (2004): Characterisation of two triple resistant field isolates of Teladorsagia from Scottish lowland sheep farms. Veterinary Parasitology, 123, 189–99
BATH, G.F., J.A. VAN WYK (2009): The Five Point Check© for targeted selective treatment of internal parasites in small ruminants. Small Ruminant Research, 86, 6–13
BAUER, C., (2001): Multispecific resistance of trichostrongyles to benzimidazoles in a goat herd in Germany. Deutsche tierärztliche Wochenschrift, 108, 49–50
BAUER, C., N. FIEGE, D. KLATTE, J. ENNINGA, H.-J. BÜRGER (1988): Felduntersuchungen zur Anthelmintikaresistenz von Trichostrongyliden in hessischen Schafherden. Berliner und Münchner Tierärztliche Wochenschrift, 101, 185–189
BENTOUNSI, B., S. MERADI, J. CABARET (2012): Towards finding effective indicators (diarrhoea and anaemia scores and weight gains) for the implementation of targeted selective treatment against the gastro-intestinal nematodes in lambs in a steppic environment. Veterinary Parasitology, 187, 275–279
Literaturverzeichnis
134
BESIER, R.B., (2008): Targeted treatment strategies for sustainable worm control in small ruminants. Tropical Biomedicine, 25, 9–17
BESIER, R.B., R.A. LOVE, J. LYON, A.J. VAN BURGEL (2010): A targeted selective treatment approach for effective and sustainable sheep worm management: investigations in Western Australia. Animal Production Science, 50, 1034-1042
BESIER, R.B., S.C.J. LOVE (2003): Anthelmintic resistance in sheep nematodes in Australia : the need for new approaches. Australian Journal of Experimental Agriculture, 43, 1383–1391
BORGSTEEDE, F.H.M., D.D. DERCKSEN, R. HUIJBERS (2007): Doramectin and albendazole resistance in sheep in The Netherlands. Veterinary Parasitology, 144, 180–183
BROUGHAN, J.M., R. WALL (2007): Faecal soiling and gastrointestinal helminth infection in lambs. International Journal for Parasitology, 37, 1255–1268
BUSIN, V., F. KENYON, N. LAING, M.J. DENWOOD, D. MCBEAN, N.D. SARGISON, K. ELLIS (2013): Addressing sustainable sheep farming: Application of a targeted selective treatment approach for anthelmintic use on a commercial farm. Small Ruminant Research, 110, 100–103
CABARET, J., N. GASNIER (1998): Faecal egg counts are representative of digestive-tract strongyle worm burdens in sheep and goats. Parasite, 5, 137 – 142
CABARET, J., V. GONNORD, J. CORTET, C. SAUVÉ, J. BALLET, H. TOURNANDRE, M. BENOIT (2006): Indicators for internal parasitic infections in organic flocks: the diarrhoea score (Disco) proposal for lambs. Joint Organic Congress, Odense, Dänemark
CEZAR, A.S., G. TOSCAN, G. CAMILLO, L.A. SANGIONI, H.O. RIBAS, F.S.F. VOGEL (2010): Multiple resistance of gastrointestinal nematodes to nine different drugs in a sheep flock in southern Brazil. Veterinary Parasitology, 173, 157–160
CHANDRAWATHANI, P., P.J. WALLER, M. ADNAN, J. HÖGLUND (2003): Evolution of high-level, multiple anthelmintic resistance on a sheep farm in
Literaturverzeichnis
135
Malaysia. Tropical Animal Health and Production, 35, 17–25
COLES, G.C., C. BAUER, F.H. BORGSTEEDE, S. GEERTS, T.R. KLEI, M.A. TAYLOR, P.J. WALLER (1992): World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) methods for the detection of anthelmintic resistance in nematodes of veterinary importance. Veterinary Parasitology, 44, 35–44
COLES, G.C., F. JACKSON, W.E. POMROY, R.K. PRICHARD, G. VON SAMSON-HIMMELSTJERNA, A. SILVESTRE, M.A. TAYLOR, J. VERCRUYSSE (2006): The detection of anthelmintic resistance in nematodes of veterinary importance. Veterinary Parasitology, 136, 167–185
CRINGOLI, G., L. RINALDI, V. VENEZIANO, L. MEZZINO, J. VERCRUYSSE, F. JACKSON, (2009): Evaluation of targeted selective treatments in sheep in Italy: effects on faecal worm egg count and milk production in four case studies. Veterinary parasitology, 164, 36–43
DORN, H.E., (1997): Untersuchungen zur Resistenz von Magen- Darm- Nematoden des Schafes gegen Anthelmintika auf Levamisol- und Mebendazolbasis. München, Ludwig-Maximilians- Universität, Diss.
DÜWEL, D., K. SCHMID, G. BECHMANN (1987): Benzimidazol-resistente Haemonchus contortus beim Schaf in der BR Deutschland. Berliner und Münchner Tierärztliche Wochenschrift, 99, 120–123
GABA, S., J. CABARET, C. CHYLINSKI, C. SAUVÉ, J. CORTET, A. SILVESTRE (2012): Can efficient management of sheep gastro-intestinal nematodes be based on random treatment? Veterinary Parasitology, 190, 178–184
GABA, S., J. CABARET, V. GINOT, A. SILVESTRE (2006): The early drug selection of nematodes to anthelmintics: stochastic transmission and population in refuge. Parasitology, 133, 345–356
GABA, S., J. CABARET, C. SAUVÉ, J. CORTET, A. SILVESTRE (2010): Experimental and modeling approaches to evaluate different aspects of the efficacy of Targeted Selective Treatment of anthelmintics against sheep parasite nematodes. Veterinary Parasitology, 171, 254–262
Literaturverzeichnis
136
GALLIDIS, E., E. PAPADOPOULOS, S. PTOCHOS, G. ARSENOS (2009): The use of targeted selective treatments against gastrointestinal nematodes in milking sheep and goats in Greece based on parasitological and performance criteria. Veterinary Parasitology, 164, 53–58.
GANTER, M., (Hrsg.) (2009): Lehrbuch der Schafkrankheiten. Parey- Verlag, Stuttgart, S. 30
GREER, A.W., F. KENYON, D.J. BARTLEY, E.B. JACKSON, Y. GORDON, A.A. DONNAN, D.W. MCBEAN, F. JACKSON (2009): Development and field evaluation of a decision support model for anthelmintic treatments as part of a targeted selective treatment (TST) regime in lambs. Veterinary Parasitology, 164, 12–20
HIEPE, T., (2009): Parasitäre Erkrankungen. In M. GANTER (Hrsg.): Lehrbuch der Schafkrankheiten. Parey- Verlag, Stuttgart, S. 314–323.
HOSTE, H., C. CHARTIER, Y. LEFRILEUX, C. GOUDEAU, C. BROQUA, I. PORS, J.P. BERGEAUD, P. DORCHIES (2002a): Targeted application of anthelmintics to control trichostrongylosis in dairy goats: result from a 2-year survey in farms. Veterinary Parasitology, 110, 101–108
HOSTE, H., Y. LEFRILEUX, A. POMMARET (2002b): Comparison of selective and systematic treatments to control nematode infection of the digestive tract in dairy goats. Veterinary Parasitology, 106, 345–355
J. THOMPSON, H.M., (1984): Body condition scoring of sheep. In Practice, 6, 91–93
JACKSON, F., R.L. COOP (2000): The development of anthelmintic resistance in sheep nematodes. Parasitology, 120 Suppl, 95–107
JACKSON, F., P. WALLER (2008): Managing refugia. Tropical Biomedicine, 25, 34–40
KAPLAN, R.M., (2004): Drug resistance in nematodes of veterinary importance: a status report. Trends in Parasitology, 20, 477–481
Literaturverzeichnis
137
KAPLAN, R.M., J.M. BURKE, T.H. TERRILL, J.E. MILLER, W.R. GETZ, S. MOBINI, E. VALENCIA, M.J. WILLIAMS, L.H. WILLIAMSON, M. LARSEN, A.F. VATTA (2004): Validation of the FAMACHA eye color chart for detecting clinical anemia in sheep and goats on farms in the southern United States. Veterinary Parasitology, 123, 105–120
KENYON, F., A.W. GREER, G.C. COLES, G. CRINGOLI, E. PAPADOPOULOS, J. CABARET, B. BERRAG, M. VARADY, J.A. VAN WYK, E. THOMAS, J. VERCRUYSSE, F. JACKSON (2009): The role of targeted selective treatments in the development of refugia-based approaches to the control of gastrointestinal nematodes of small ruminants. Veterinary Parasitology, 164, 3–11
KENYON, F., D. MCBEAN, A.W. GREER, C.G.S. BURGESS, A.A. MORRISON, D.J. BARTLEY, Y. BARTLEY, L. DEVIN, M. NATH, F. JACKSON (2013): A comparative study of the effects of four treatment regimes on ivermectin efficacy, body weight and pasture contamination in lambs naturally infected with gastrointestinal nematodes in Scotland. International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance 3, 77–84
KOOPMANN, R., C. HOLST, C. EPE (2006): Erfahrungen mit der FAMACHA © - Eye-Colour-Karte zur Identifizierung von Schafen und Ziegen für die gezielte anthelminthische Behandlung. Berliner und Münchner Tierärztliche Wochenschrift, 119, 436–442
LEATHWICK, D.M., T.S. WAGHORN, C.M. MILLER, D.S. ATKINSON, N.A. HAACK, A. OLIVER (2006): Selective and on-demand drenching of lambs : Impact on parasite populations and performance of lambs. New Zealand Veterinary Journal, 54, 305– 312
MALAN, F.S., J.A. VAN WYK, C.D. WESSELS (2001): Clinical evaluation of anaemia in sheep: early trials. The Onderstepoort Journal of Veterinary Research, 68, 165–174
MCKENNA, P.B., (1987): The estimation of gastrointestinal strongyle worm burdens in young sheep flocks: a new approach to the interpretation of faecal egg counts. New Zealand Veterinary Journal, 35, 94–97
MOLENTO, M.B., F.S. FORTES, D.A.S. PONDELEK, F.DE ALMEIDA BORGES, A.C.DE SOUZA CHAGAS, J.F. DE J. TORRES-ACOSTA, P. GELDHOF (2011): Challenges of nematode control in ruminants: focus on Latin America. Veterinary Parasitology, 180, 126–132
Literaturverzeichnis
138
MOLENTO, M.B., A.A. GAVIÃO, R.A. DEPNER, C.C. PIRES (2009): Frequency of treatment and production performance using the FAMACHA method compared with preventive control in ewes. Veterinary Parasitology, 162, 314–319
MOLENTO, M.B., J.A. VAN WYK, G.C. COLES (2004): Sustainable worm management. The Veterinary Record, 155, 95–96
MORITZ, E.I., (2005): Ein Beitrag zum Befall mit Endoparasiten und zum Nachweis von Benzimidazolresistenzen bei Magen-Darm-Strongyliden der Schafe in Niedersachsen. Hannover, Tierärztliche Hochschule, Diss.
OUZIR, M., B. BERRAG, A. BENJOUAD, J. CABARET (2011): Use of pathophysiological indicators for individual decision of anthelmintic treatment of ewes against gastro-intestinal nematodes in Morocco. Veterinary Parasitology, 180, 372–377
PALCY, C., A. SILVESTRE, C. SAUVE, J. CORTET, J. CABARET, J. (2010): Benzimidazole resistance in Trichostrongylus axei in sheep: long-term monitoring of affected sheep and genotypic evaluation of the parasite. Veterinary Journal, 183, 68–74
PERBIX, C., (2008): Die Resistenzlage von Magen-Darm-Strongyliden gegenüber Moxidectin in deutschen Schafherden. Hannover, Tierärztliche Hochschule, Diss.
PFÜLLER, H., (1990): In vitro- und in vivo- Untersuchungen zur Anthelmintika- Resistenz Situation bei Nematodeninfektionen von Schaf und Pferd. Berlin, Humboldt- Universität, Diss.
RINALDI, L., G. CRINGOLI (2012): Parasitological and pathophysiological methods for selective application of anthelmintic treatments in goats. Small Ruminant Research, 103, 18–22
SCHEUERLE, M.C., M. MAHLING, K. PFISTER (2009): Anthelminthic resistance of Haemonchus contortus in small ruminants in Switzerland and Southern Germany. Wiener klinische Wochenschrift, 121 Suppl , 46–49
Literaturverzeichnis
139
SCHNIEDER, T. (Hrsg.) (2006): Veterinärmedizinische Parasitologie Parey- Verlag, Stuttgart, S. 191-208
SCOTT, I., W.E. POMROY, P.R. KENYON, G. SMITH, B. ADLINGTON, A. MOSS (2013): Lack of efficacy of monepantel against Teladorsagia circumcincta and Trichostrongylus colubriformis. Veterinary Parasitology, 198, 166–171
SILVESTRE, A., V. LEIGNEL, B. BERRAG, N. GASNIER, J.-F. HUMBERT, C. CHARTIER, J. CABARET (2002): Sheep and goat nematode resistance to anthelmintics : pro and cons among breeding management factors. Veterinary Research, 33, 465–480
SMITH, G., B.T. GRENFELL, V. ISHAM, S. CORNELL (1999): Anthelmintic resistance revisited: under-dosing, chemoprophylactic strategies, and mating probabilities. International Journal for Parasitology, 29, 77–91
STAFFORD, K. A., E.R. MORGAN, G.C. COLES (2009): Weight-based targeted selective treatment of gastrointestinal nematodes in a commercial sheep flock. Veterinary Parasitology, 164, 59–65
SUTHERLAND, I. A, A. DAMSTEEGT, C.M. MILLER, D.M. LEATHWICK (2008): Multiple species of nematodes resistant to ivermectin and a benzimidazole-levamisole combination on a sheep farm in New Zealand. New Zealand Veterinary Journal, 56, 67–70
TAYLOR, M. A., J. LEARMOUNT, E. LUNN, C. MORGAN, B.H. CRAIG (2009): Multiple resistance to anthelmintics in sheep nematodes and comparison of methods used for their detection. Small Ruminant Research, 86, 67–70
VOIGT, K., M. SCHEUERLE, D. HAMEL (2012): Triple anthelmintic resistance in Trichostrongylus spp. in a German sheep flock. Small Ruminant Research, 106, 30–32
WAGHORN, T.S., D.M. LEATHWICK, C.M. MILLER, D.S. ATKINSON (2008): Brave or gullible: testing the concept that leaving susceptible parasites in refugia will slow the development of anthelmintic resistance. New Zealand Veterinary Journal, 56, 158–163
WOOD, I.B., N.K. AMARAL, K. BAIRDEN, J.L. DUNCAN, T. KASSAI, J.B. MALONE, J.A. PANKAVICH, R.K. REINECKE, O. SLOCOMBE, S.M. TAYLOR (1995):
Literaturverzeichnis
140
World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) second edition of guidelines for evaluating the efficacy of anthelmintics in ruminants (bovine, ovine, caprine). Veterinary Parasitology, 58, 181–213
WYK, J. a VAN, (2001): Refugia--overlooked as perhaps the most potent factor concerning the development of anthelmintic resistance. The Onderstepoort Journal of Veterinary Research, 68, 55–67
WYK, J. A. VAN, H. HOSTE, R.M. KAPLAN, R.B. BESIER (2006): Targeted selective treatment for worm management--how do we sell rational programs to farmers? Veterinary Parasitology, 139, 336–346
WYK, J.A. VAN, G.F. BATH (2002): The FAMACHA system for managing haemonchosis in sheep and goats by clinically identifying individual animals for treatment. Veterinary Research, 33, 509–529
YOUNG, M., (2006): Dag Score [Internet: URL: http://www.sil.co.nz/getdoc/c4c62191-3457-488c-9b17-1b82454f537d/Dag-Score_pdf.aspx (Homepage der Sheep Improvement Ltd., Neuseeland), 18.04.2012]
Anhang
141
9 Anhang
9.1 Abbildungverzeichnis
Abbildung 1: Dag-Score (YOUNG, 2006) ............................................................ 42
Abbildung 2: Grafische Darstellung des MDS-EpG-Verlaufes ............................. 55
Abbildung 3: Grafische Darstellung der Strongyloides-EpG-Verläufe .................. 58
Abbildung 4: Grafische Darstellung der Gewichtsverläufe ................................... 59
Abbildung 5: Verlauf der täglichen Zunahmen ..................................................... 63
Abbildung 6: Verlauf des FAMACHA-Score ........................................................ 67
Abbildung 7: Verlauf des BCS ............................................................................. 68
Abbildung 8: Verlauf des Dag-Score .................................................................. 72
Abbildung 9: Grafische Darstellung der Korrelation der täglichen Zunahmen zu
der MDS-EpG über alle Gruppen ................................................... 74
Abbildung 10: Grafische Darstellung der Korrelation der täglichen Zunahmen zu
der Strongyloides-EpG über alle Gruppen ...................................... 75
Abbildung 11: Grafische Darstellung der Korrelation der täglichen Zunahmen mit
dem FAMACHA Score ohne Trennung nach Gruppen ................... 76
Abbildung 12: Grafische Darstellung der Korrelation von FAMACHA Score und
MDS-EpG Gruppe III (TST♂) ......................................................... 78
Abbildung 13: Grafische Darstellung der Korrelation vom FAMACHA Score und
MDS-EpG Gruppe IV (Total♂) ........................................................ 78
Abbildung 14: Grafische Darstellung der Korrelation von BCS und täglichen
Zunahmen ohne Trennung nach Gruppen ..................................... 80
Abbildung 15: Grafische Darstellung der Korrelation von BCS und täglichen
Zunahmen für Gruppe III (TST♂) ................................................... 80
Abbildung 16: Grafische Darstellung der Korrelation von BCS und MDS-EpG für
Gruppe III (TST♂) ........................................................................... 81
Abbildung 17: Grafische Darstellung der Korrelation von BCS und Strongyloides-
EpG für Gruppe III (TST♂) ............................................................. 82
Abbildung 18: Grafische Darstellung der Korrelation von Dag-Score und täglichen
Zunahmen für Gruppe III (TST♂) ................................................... 84
Anhang
142
Abbildung 19: Grafische Darstellung der Korrelation von Dag-Score und MDS-EpG
für Gruppe III (TST♂) ..................................................................... 85
Abbildung 20: Grafische Darstellung der Korrelation von Dag-Score und
Strongyloides-EpG für Gruppe III (TST♂) ...................................... 86
Abbildung 21: Grafische Darstellung der Korrelation von Dag-Score und
Strongyloides-EpG für Gruppe IV (Total♂) ..................................... 87
Abbildung 22: Grafische Darstellung der Ergebnisse der Eizahlreduktionstests ... 90
Abbildung 23: Grafische Übersicht (Boxplot) über die Verteilung der
Nematodengattungen im Labmagen der Versuchsgruppen. ........ 93
Abbildung 24: Grafische Übersicht über die Verteilung der Nematodengattungen im
Labmagen der Sentineltiere ........................................................... 94
Abbildung 25: Grafische Übersicht über die Verteilung der Nematodengattungen im
Dünndarm der Versuchsgruppen.................................................... 96
Abbildung 26: Grafische Übersicht über die Verteilung der Nematodengattungen im
Dünndarm der Sentineltiere. ........................................................... 97
Abbildung 27: Grafische Übersicht über die Verteilung der Nematodengattungen im
Dickdarm aller Gruppen.. ................................................................ 99
Abbildung 28: Grafische Übersicht über die Verteilung der Nematodengattungen im
Dickdarm der Sentineltiere ........................................................... 100
Abbildung 29: Grafische Übersicht über die Verteilung der Nematodengattungen
der Versuchsgruppen.. ................................................................. 103
Abbildung 30: Grafische Darstellung der Verteilung der Nematodengattungen der
Sentineltiere ohne Unterteilung nach Darmabschnitten................ 104
Anhang
143
9.2 Tabellenverzeichnis
Tabelle 1: Versuchsgruppen .................................................................................. 33
Tabelle 2: Zeitliche Übersicht über die durchgeführten Maßnahmen .................... 34
Tabelle 3: Anzahl der zum Eizahlreduktionstest herangezogenen Lämmer .......... 39
Tabelle 4: Klinische Ausprägung der fünf Stufen des Body condition score .......... 41
Tabelle 5: Morphologische Merkmale der Magen-Darm-Nematoden .................... 49
Tabelle 6: Durchschnittliche MDS-EpG (arithmetische Mittel) ............................... 54
Tabelle 7: Durchschnittliche Strongyloides-EpG .................................................... 57
Tabelle 8: Mittelwerte der Gewichte (in kg) ............................................................ 60
Tabelle 9: Mittelwerte der täglichen Zunahmen (in Gramm pro Tag) ..................... 62
Tabelle 10: Übersicht über die p-Werte an Zeitpunkten mit signifikanten
Unterschieden der Tageszunahmen bei Gruppe I (TST♀) und II
(Total♀) ............................................................................................... 64
Tabelle 11: Übersicht über die p-Werte an Zeitpunkten mit signifikanten
Unterschieden der Tageszunahmen bei Gruppe III (TST♂) und IV
(Total♂)................................................................................................ 65
Tabelle 12: Mittelwerte, Standardabweichungen und Medianwerte des FAMACHA-
Scores ................................................................................................. 66
Tabelle 13: Mittelwerte des BCS .......................................................................... 69
Tabelle 14: Mittelwerte des Dag-Score ................................................................ 71
Tabelle 15: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation von Tageszunahmen und MDS-EpG .......................... 73
Tabelle 16: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation von Tageszunahmen und Strongyloides-EpG ............. 74
Tabelle 17: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation zwischen Tageszunahmen und FAMACHA Scores .... 76
Tabelle 18: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des FAMACHA-Score und der MDS-EpG ................... 77
Tabelle 19: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des BCS und der täglichen Zunahmen ....................... 79
Anhang
144
Tabelle 20: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des BCS und der MDS-EpG ....................................... 81
Tabelle 21: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des BCS und der Strongyloides-EpG ........................ 82
Tabelle 22: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des Dag-Score und der täglichen Zunahmen .............. 83
Tabelle 23: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des Dag-Score und der MDS-EpG .............................. 85
Tabelle 24: Übersicht über Bestimmtheitsmaß, Korrelationskoeffizient und p-Werte
der Korrelation des Dag-Score und der Strongyloides-EpG ................ 86
Tabelle 25: Ergebnisse Eizahlreduktionstests MDS und Strongyloides ............... 88
Tabelle 26: Übersicht über die Schlacht-bzw. Todesdaten der Tiere, deren letzte
Behandlung sowie die Art der Behandlung (Präparat, Dosierung) ...... 91
Tabelle 27: Prozentuale Verteilung der Nematodengattungen im Labmagen der
Sentineltiere ........................................................................................ 92
Tabelle 28: Prozentuale Verteilung der Nematodengattungen im Dünndarm der
Sentineltiere ........................................................................................ 95
Tabelle 29: Prozentuale Verteilung der Nematodengattungen im Dickdarm der
Sentineltiere ........................................................................................ 98
Tabelle 30: Übersicht über Mittelwerte (MW) und Standardabweichungen (SD) der
Nematodengattungen der Versuchsgruppen ohne Unterteilung nach
Darmabschnitt ................................................................................... 101
Tabelle 31: Übersicht über die prozentuale Verteilung der Nematodengattungen der
Sentineltiere ohne Unterteilung nach Darmabschnitt ........................ 103
Danksagung
145
Danksagung
Ganz besonders möchte ich bei Herrn Prof. Dr. Martin Ganter für die Überlassung
dieses spannenden Themas, die hervorragende Betreuung und die unermüdliche
Hilfe bei allen Problemen im Zusammenhang mit der Doktorarbeit sowie die stets
zeitnahen Korrekturen danken.
Bedanken möchte ich mich bei Frau Prof. Dr. Christina Strube, Dr. Claudia Böhm
und den Mitarbeitern des parasitologischen Institutes, insbesondere bei Petra
Thomas, für die Erklärung der Durchführung der parasitologischen Sektionen, die
Bereitstellung der Materialien und Räumlichkeiten hierfür, das Ertragen der
Geruchsbelästigung, das Bereitstellen der Kaffeemaschine und für all die anderen
Hilfestellungen und Ratschläge die ich bekommen habe.
Ein ganz großer Dank geht an Jacqueline Wolfsen aus dem Labor der Klinik für
kleine Klauentiere, die mich unermüdlich bei den Kotprobenuntersuchungen und den
parasitologischen Sektionen, zum Teil bis spät Abends, sowie allen weiteren
Laborangelegenheiten unterstützt und unterhalten hat. Ohne dich wäre ich ziemlich
sicher verzweifelt!
Bedanken möchte ich mich auch bei Barbara Schwert, Thekla Großmann, Christina
Boss, Melanie Stöter und den anderen Mitarbeitern des Labors der Klinik für kleine
Klauentiere, die mich beim „Würmchen-Picken“ und in sonstiger Weise unterstützt
haben.
Vielen Dank an Bernd Möller, Tobias Hantscher, Vincent und Jay für die
Unterstützung, ohne die der Versuch so nicht möglich gewesen wäre, für die Hilfe
beim Daten und Proben sammeln, für das Weidemanagement, das im Rahmen des
Versuches angefallen ist, fürs Schafe treiben und fangen, für die Beherbergung des
Kotprobenlabors und natürlich für die gute Laune und die nette Atmosphäre während
der Versuchsphase.
Danksagung
146
Vielen Dank an die Mitarbeiter der Klinik für kleine Klauentiere, der Ambulanz und
an meine Mitdoktoranden für die schöne Zeit an der Klinik, die Unterstützung bei der
Doktorarbeit und der Arbeit im Stall und für die netten Mittagspausen.
Ganz besonders bedanken möchte ich mich bei den besten Bürokollegen die es gibt,
Carina und Julia F. sowie bei meiner Nachfolgerin Julia S. für die immer lustige und
unterhaltsame Zeit, die Unterstützung, das gegenseitige Aufbauen in Tiefphasen des
Schaffens und für die Plauderpausen. Ich hätte euch gerne auch noch die restliche
Schreibphase bei mir gehabt, dann wäre sicherlich vieles leichter gewesen!
Danke an Frau Prof. Dr. Janina Demeler vom Institut für Parasitologie der FU Berlin
für die Beratung und den Meinungsaustausch mit Herrn Ganter bezüglich der
Probleme, die sich während der Versuchsphase aufgetan haben.
Dankeschön an alle, die zum Korrekturlesen her halten mussten und dies
gewissenhaft und schnell erledigt haben: Julia O., Julia F., Andy, Clau, Tiny und
Sebastian.
Danke an meine engsten Freunde Julchen, Andy, Clau, Tiny, Annika, Lisi, Katrin und
Caro S., die immer für unterhaltsamen Freizeitausgleich zu haben waren. Besonders
möchte ich mich bei Julia O. bedanken; meine treuste Studienkollegin und auch
während der Doktorarbeit immer für einen Plausch zu haben
Ein ganz besonderer Dank an Robert, der mich in der ganzen Zeit, vor allem in der
Phase des Schreibens, mit allen Launen ertragen hat, immer für mich da war, mich
aus jedem noch so tiefen Frustloch wieder herausgeholt hat, immer an mich geglaubt
und mich ermutigt hat und mich auf alle erdenklichen Arten unterstützt hat.
Zu guter Letzt gebührt ein ganz besonderer Dank natürlich meinen Eltern, die mich
immer unterstützt und mich ermutigt haben, die an mich geglaubt haben und mir
immer mit Rat und Tat zur Seite standen und die mir so vieles ermöglicht haben,
ohne das ich gar nicht so weit gekommen wäre. Ihr seid die besten!