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Versuchsübersicht
Mikrobiologische Wasseruntersuchungen
Tag Versuch 13
Bestimmung
der Kolonie-
zahl
Versuch 14
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Flüssigkeitsan-
reicherung
Versuch 15
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Membran-
filtrations-
verfahren
Versuch 16
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Colilert-
Verfahren
Versuch 17
Nachweis
E. coli:
Mikrotiter-
platten-
verfahren
Versuch 18
Identifizierung
mit API 20 E-
System
Montag Anlegen von
Gussplatten
Ansatz von
Flüssigkulturen
Membran-
filtration
Animpfen von
Quanti-Trays
Animpfen
von Mikro-
titerplatten
-
Dienstag - Subkulturen
Endo-Agar
Subkulturen
CASO-Agar
Auswertung - -
Mittwoch Auszählung Ansatz: kleine
Bunte Reihe
Oxidase-Test,
Auswertung
- Auswertung -
Donners-
tag
Auszählung Auswertung
Bunte Reihe
- - - Ansetzen von
Teststreifen
Freitag Auszählung Auswertung
Bunte Reihe
- - - Auswertung
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Versuch Nr. 13: Bestimmung der Koloniezahl
1. Tag (Montag)
Proben: Trinkwasser, Ruhrwasser.
Beschreibung der Wasserproben.
Ansatz: - Trinkwasser unverdünnt
- Ruhrwasser 1:10, 1:100
und 1:1000.
Anlegen von Gussplatten mit
Hefeextraktagar.
Bebrütung: 22 °C und 36 °C.
2. – 4. Tag (Mittwoch bis
Freitag)
Auszählung der Kolonien nach
2, 3 und 4 Tagen (Mittwoch bis
Freitag).
Berechnen der Koloniezahlen
pro mL.
Quelle: Madigan und Martinko, Brock Mikrobiologie, 2009.
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Versuchsübersicht
Mikrobiologische Wasseruntersuchungen
Tag Versuch 13
Bestimmung
der Kolonie-
zahl
Versuch 14
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Flüssigkeitsan-
reicherung
Versuch 15
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Membran-
filtrations-
verfahren
Versuch 16
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Colilert-
Verfahren
Versuch 17
Nachweis
E. coli:
Mikrotiter-
platten-
verfahren
Versuch 18
Identifizierung
mit API 20 E-
System
Montag Anlegen von
Gussplatten
Ansatz von
Flüssigkulturen
Membran-
filtration
Animpfen von
Quanti-Trays
Animpfen
von Mikro-
titerplatten
-
Dienstag - Subkulturen
Endo-Agar
Subkulturen
CASO-Agar
Auswertung - -
Mittwoch Auszählung Ansatz: kleine
Bunte Reihe
Oxidase-Test,
Subkulturen in
Tryptophan-
Bouillon
- Auswertung -
Donners-
tag
Auszählung Auswertung
Bunte Reihe
Auswertung - - Ansetzen von
Teststreifen
Freitag Auszählung Auswertung
Bunte Reihe
- - - Auswertung
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Quelle: Süßmuth et al., 1999
Versuch Nr. 14: Nachweis von E. coli und coliformen
Bakterien mittels Flüssigkeitsanreicherung
4. und 5. Tag (Donnerstag und
Freitag)
Ablesen der Reaktionen der vier Bunten
Reihen (positive bzw. negative
Reaktionen)
1. Lactose-Bouillon (36 °C, 24 h - 48 h):
Gas- und Säurebildung
2. Glucose-Bouillon (44 °C, 24 h):
Gas- und Säurebildung
3. Tryptophan-Bouillon (36 °C, 24 h):
Indolbildung (Zugabe von
Kovacs-Reagenz)
4. Nähragar (36 °C 24 h): Oxidase-Test
5. Citratagar (36 °C, 24 h - 48 h):
Wachstum
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Prinzip des Indolnachweises
1. Abbau von Tryptophan zu Ammoniak, Pyruvat und Indol.
Quelle: Alexander und Strete, Mikrobiologisches Grundpraktikum: ein Farbatlas, 2006.
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Prinzip des Indolnachweises
2. Nachweis von Indol durch Reaktion mit para-Dimethylaminobenzaldehyd
zu Rosindol.
Indol Dimethylamino-
benzaldehyd
Rosindol
positive Reaktion
negative Reaktion
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Quelle: Süßmuth et al., 1999
Versuch Nr. 14: Nachweis von E. coli und coliformen
Bakterien mittels Flüssigkeitsanreicherung 4. und 5. Tag (Donnerstag und
Freitag)
Ablesen der Reaktionen der vier Bunten
Reihen (positive bzw. negative
Reaktionen)
1. Lactose-Bouillon (36 °C, 24 h - 48 h):
Gas- und Säurebildung
2. Glucose-Bouillon (44 °C, 24 h):
Gas- und Säurebildung
3. Tryptophan-Bouillon (36 °C, 24 h):
Indolbildung
4. Nähragar (36 °C 24 h): Oxidase-Test
5. Citratagar (36 °C, 24 h - 48 h): Wachstum
Angabe der Ergebnisse:
Nachweis von E. coli, coliformen
Bakterien bzw. Nicht-Coliformen in
100 mL Wasserprobe.
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Differenzierung E. coli, Coliforme und
Nicht-Coliforme
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Ablauf und Zeitbedarf der Nachweismethode
1. Flüssigkeitsanreicherung in Lactose-Pepton-Bouillon (Montag)
36 °C, max. 44 h ± 4 h
2. bei Gas- und Säurebildung, Subkultur auf Endo-Agar (Dienstag)
36 °C, 24 h ± 4 h
3. Bunte Reihe (Einzelkolonien von Reinkulturen) (Mittwoch bis Freitag)
E. coli Coliforme
Cytochromoxidase-Reaktion (Nähr-Agar, 36 °C, 24 h) - -
Gas- und Säurebildung in Lactose-Bouillon (36 °C, 44 h) + +
Gas- und Säurebildung in Glucose-Bouillon (44 °C, 24 h) + -
Indolbildung in Tryptophan-Bouillon (36 °C, 24 h) + - (+)
Verwertung von Citrat (36 °C, 44 h) - + (-)
Methode zum qualitativen Nachweis von E. coli/coliformen Bakterien in
natürlichem Mineralwasser, Quellwasser und Tafelwasser (Mineral- und
Tafelwasserverordnung)
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Versuchsübersicht
Mikrobiologische Wasseruntersuchungen
Tag Versuch 13
Bestimmung
der Kolonie-
zahl
Versuch 14
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Flüssigkeitsan-
reicherung
Versuch 15
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Membran-
filtrations-
verfahren
Versuch 16
Nachweis
E. coli und
Coliforme:
Colilert-
Verfahren
Versuch 17
Nachweis
E. coli:
Mikrotiter-
platten-
verfahren
Versuch 18
Identifizierung
mit API 20 E-
System
Montag Anlegen von
Gussplatten
Ansatz von
Flüssigkulturen
Membran-
filtration
Animpfen von
Quanti-Trays
Animpfen
von Mikro-
titerplatten
-
Dienstag - Subkulturen
Endo-Agar
Subkulturen
CASO-Agar
Auswertung - -
Mittwoch Auszählung Ansatz: kleine
Bunte Reihe
Oxidase-Test,
Auswertung
- Auswertung -
Donners-
tag
Auszählung Auswertung
Bunte Reihe
- - - Ansetzen von
Teststreifen
Freitag Auszählung Auswertung
Bunte Reihe
- - - Auswertung
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Versuch Nr. 18: Identifizierung coliformer und
anderer Bakterien mit einem standardisierten
Testsystem
Kommerzielle, standardisierte Testsysteme in Form von miniaturisierten
Bunten Reihen:
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Versuch Nr. 18: Identifizierung coliformer und
anderer Bakterien mit einem standardisierten
Testsystem (API 20 E)
1. Tag (Donnerstag)
Identifizierung von 4 Reinkulturen
auf Nähragar mit API 20 E-System
(aus Ruhrwasser gewonnene Isolate
in Versuch Nr. 14).
Beimpfen von 4 Teststreifen mit
4 Reinkulturen auf Nähragar aus
Versuch Nr. 14.
Bebrütung der Streifen: 36 °C, 24 h.
2. Tag (Freitag)
Auswertung und Identifizierung.
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Versuchsablauf