bioinformatik i: grundlagen der gentechnik/genomik · 3 enzyme der gentechnologie i. nukleasen 1....
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Bioinformatik I: Grundlagen der Gentechnik/Genomik
Prof. Dr. Antje von Schaewen (10.12. und 14.01) [email protected] von Prof. Jörg Kudla (Freisemester)Institut für Biologie und Biotechnologie der PflanzenSchlossplatz 7Email: [email protected]
Schwerpunkte:
1. Werkzeuge der Gentechnologie (Enzyme)
2. Grundlegende Methoden der Gentechnologie
3. Vektoren, Klonieren und finden rekombinanter Klone
4. Reportergene, transgene Organismen und ihre Nutzung
5. Anwendungen der Gentechnologie
Grundlagen der Genomik - Teil Kudla: Scripte
Scripte: auf der Website der AG Kudla unter „teaching“
http://www.uni-muenster.de/Biologie.IBBP/agkudla/lehre/lehre.html
Login: kursPasswort: mars
- Scripte bitte VOR der Vorlesung herunterladen- es stehen für jede Vorlesung drei inhaltlich identische
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Grundlagen der Gentechnik: Literatur und Scripte
Literatur:
1. D. Nicholl: Gentechnische Methoden, Spektrum Verlag, 324 S., 26 €
2. T.A. Brown: Gentechnologie für Einsteiger, Spektrum, 35 €
3. C. Mülhardt: Der Experimentator: Molekularbiologie/Genomics, Spektrum Verlag, 33 €
4. Lodish et al.: Molecular Cell Biology, Freeman Verlag, Kapitel 9, ca. 72 €
NICHT: Jansohn, Gentechnische Methoden, Spektrum Verlag
Klonierung: Das grundlegende Experiment der Gentechnologie
Amp Selektion
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Enzyme der Gentechnologie
I. Nukleasen1. Restrikonsendonukleasen2. Exonukleasen
II. Modifizierende Enzyme1. Ligasen2. Phosphatasen / Kinasen / Transferasen
III. Polymerasen1. DNA - Polymerasen2. RNA - Polymerasen3. reverse Transkriptasen
Noch einmal:das 5‘ (-P) und das 3‘ (-OH) Ende!
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Restriktionsendonukleasen
- Entdeckt als restringierende Systeme bei Phageninfektionen- bestehen aus einer Nuklease- und einer Methylase-Aktivität
Nomenklatur:Name des Organismus + Nummer des Restriktionsenzyms
z.B.: Escherichia coli Enzym1 = Eco RISerratia marcensens Enzym1 = Sma IHaemophilus influenzae Enzym3 = Hae III
3 Typen von Restriktionsenzymen sind bekannt
Typ I: z. B. Eco B, Eco K, „komplexe Nukleasen“, zugleich Methylase und Nukleasebenötigen ATP, Mg2+ und S-Adenosylmethioninspezifische 15 bp Bindungsstelle, schneiden ca. 1000 bp entfernt
Typ III: z. B. Hga I, Hph Ibenötigen ATP, Mg2+
nicht-palindromische Erkennungssequenz, schneidet ca. 5 bis 15 bp entfernt, bildet distinkte Fragmente
Restriktionsendonukleasen
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Typ II: z. B. Bam HI, Eco RIbenötigen Mg2+
palindromische Erkennungssequenz, meist 4 - 8 bpBindungs- und Schnittstelle sind identischhydrolytische Spaltungspezifische Puffer-Anforderungen (an pH und Salze)
Anwendung: physikalische Kartierung (Restriktionskarten)KlonierungSouthern-Blot HybridisierungRFLP Analyse (Genkartierung)
Restriktionsendonukleasen
3‘ Überhang
5‘ Überhang
5‘ Überhang
ohne Überhang
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Restriktionsendonukleasen - „sticky ends“
bildet einzelsträngige Enden3‘-Ende OH-Gruppe5‘-Ende PO4-Gruppe
Pst I:5‘-CTGCA/G-3‘ 5‘-CTGCAOH-3‘3‘-G/ACGTC-5‘ 3‘-GP-5‘
Eco RI:5‘-G/AATTC-3‘ 5‘-GOH-3‘3‘-CTTAA/G-5‘ 3‘-CTTAAP-5‘
Restriktionsendonukleasen - „blunt & sticky ends“
glatte Enden: können beliebig kombiniert (ligiert) werdenklebrige Enden: spezifische Basenpaarung nötig
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Kombination gleicher Enden
erlaubt die Ligation von unterschiedlichen Schnittortenmanchmal geht die Erkennungssequenz verloren (Pfeil)
Isoschizomere und „Methylierungspaare“
Isoschizomere: gleiche Erkennungssequenz, schneiden gleich(Sst I, Sac I)
Neoschizomere: gleiche Erkennungssequenz, schneiden unterschiedlich
z.B.: Sma I Xma ICCC/GGG C/CCGGGGGG/CCC GGGCC/C
Methylierungspaare: Enzyme mit gleicher Erkennungssequenz aberunterschiedlicher Methylierungsabhängigkeit
z.B.: Sau 3A spaltet GATC und GAmTC
Mbo I spaltet nur GATC
Dpn I spaltet nur GAmTC
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Schnittfrequenz von Enzymen
hängt vom GC-Gehalt ab - 50%:Tetranukleotid 1/44 256 bpHexanukleotid 1/46 4096 bpOktanukleotid 1/48 65536 bp
aber: Frequenz eines Schnittortes (bei nur C+G)GC-Gehalt 50%Sma I, CCC/GGG 1/(46 x 42) 65536 bp
GC-Gehalt 25%Sma I, CCC/GGG 1/(46 x 82) 262144 bp
Aktivität von Restriktionsenzymen
1 Einheit (1 Unit, U):
Eine Einheit eines Restriktionsenzyms ist die Menge Enzym, die 1 g DNA des Phagen in einer Stunde in speziellem Puffer bei 37°C vollständig verdaut.
ABER: Zahl der Schnittstellen (Sal I: 2, Bcl I: 8, Cla I: 14)-DNA ist linear!Temperatur?
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Wie pipettiere ich einen Restriktionsverdau ?
Reihenfolge (Nr.):x l DNA (3.)2 l 10fach Puffer (2.)x l BSA ? (4.)x l Enzym (5.)x l H20 (1.)
20 l (total)
Volumen ?DNA-Menge ?Methylierung ?Puffer ?Temperatur ?Besonderheiten ?Enzymmenge ?
II Modifizierende Enzyme - Ligasen -
T4-DNA-Ligase (Bacteriophage T4):
Eigenschaften:- verknüpft das 5‘-Phosphatende mit der 3‘-OH-Gruppe zweier DNA-Stränge (oder DNA + doppelsträngige RNA, oder zwei doppelsträngige RNAs)
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II Modifizierende Enzyme - Ligasen -
II Modifizierende Enzyme - Ligasen -
Anwendung:- Ligation von DNA-Enden (z.B. PCR-Produkte in Vektor)- Verknüpfung von Bruchstellen („Nicks“) in DNA
Bedingungen:- Mg2+, ATP
Ablauf:„sticky-end“ Ligation: 10 min – 1h, RT
„blunt-end“ Ligation: ÜN, 15°C
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II Modifizierende Enzyme - Ligasen -
-Ablauf:„sticky-end“ Ligation:
10 min – 1h, RT
„blunt-end“ Ligation:ÜN, 15°C
II Modifizierende Enzyme - RNA Ligasen -
T4-RNA-Ligase (Bacteriophage T4): single strand ligase
Eigenschaften:- verknüpft das 5‘-Phosphatende mit der 3‘-OH-Gruppe einzelsträngiger DNA oder RNA
Anwendung:- Ligation einzelsträngiger Nukleinsäuren - radioaktive 3‘ Markierung von RNA
Bedingungen: - ATP
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II Modifizierende Enzyme - Phosphatasen -
Calf Intestinal Alkaline Phosphatase (CIAP, aus B. taurus):
Eigenschaften:- Hydrolysiert die 5‘-Phosphatgruppe von DNA, RNA, rNTPs, dNTPs
Anwendung:- Dephosphorylierung von Vektorenden, um die Religationsrate zu reduzieren
Bedingungen: - Mg2+
II Modifizierende Enzyme - Kinasen -
T4-Polynucleotid-Kinase (PNK, T4 Bacteriophage):
Eigenschaften:- Überträgt das -Phosphat von ATP auf das 5‘-Ende von Nukleotiden
Anwendung:- Phosphorylierung von PCR-Produkten- 5‘-End Markierung von DNA, RNA und Oligonukleotiden
Bedingungen: - Mg2+, ATP, reduzierendes Milieu (DTT, -ME =-Mercaptoethanol)
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II Modifizierende Enzyme - Transferasen -
Terminale Desoxynucleotidyltransferase (B. taurus):
Eigenschaften:- hängt Nukleotide an freie 3‘-OH Gruppen an
Anwendung:- Homopolymerschwänze (die dadurch an DNA gekoppelt werden)- 3‘-End Markierung von DNA
Bedingungen: - Mg2+, dNTPs,
III Polymerasen- DNA Polymerasen -
DNA-Polymerase I, Holoenzym (E. coli):
Eigenschaften:- DNA-abhängige DNA-Polymerase, 3‘-Exonuclease (für doppel- und einzelsträngige DNA), 5‘-Exonuclease (für doppelsträngige DNA)
Anwendung:- Auffüllen von 5‘-Überhängen, entfernen von 3‘-Überhängen- Markierungen („nick“-Translation)
Bedingungen: - Mg2+, Primer (bzw. freies 3‘-OH)dNTPs (ohne dNTPs überwiegtdie 3‘-Exonucleaseaktivität !)
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III Polymerasen- DNA Polymerasen -
DNA-Polymerase I, „Klenow Fragment“ (E. coli):
Eigenschaften:- entspricht der DNA-Polymerase I, jedoch ohne 5‘-Exonucleaseaktivität
Anwendung:- auffüllen von 5‘-Überhängen, entfernen von 3‘-Überhängen- radioaktive Sequenzierung- cDNA-Synthese (Zweitstrang)
Bedingungen: - Mg2+, Primer (bzw. freies 3‘-OH)dNTPs (ohne dNTPs überwiegtdie 3‘-Exonucleaseaktivität)
T4-DNA-Polymerase (T4 Bacteriophage):
Eigenschaften:- DNA abhängige DNA Polymerase, 3‘-Exonuclease
Anwendung:- auffüllen von 5‘-Überhängen- bevorzugt für das entfernen von 3‘-Überhängen verwendet, aufgrund hoher Exonucleaseaktivität
Bedingungen: - Mg2+, Primer (bzw. freies 3‘-OH), dNTPs (ohne dNTPs überwiegtauch hier die 3‘-Exonucleaseaktivität !)
III Polymerasen- DNA Polymerasen -
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III Polymerasen- Thermostabile DNA Polymerasen -
DNA-abhängige Polymerasen, tolerant gegenüber hohen Temperaturen besonders geeignet für PCR Reaktionen, Sequenzierungen
Eigenschaften:
Bedingungen:- Mg2+, dNTPs, Primer (3‘-OH Ende)
Name Organismus 5’-Exonuclease 3’-Exonuclease
(„Proofreading“)
Produkt-Enden
Taq Pol. Thermus aquaticus ja nein 3’A
Pfu Pol. Pyrococcus furiusus ja ja glatt
Pwo Pol. Pyrococcus woesei ja ja glatt
Phusion, Q5, etc.
High fidelity & fast (recombinant)
ja ja glatt
III Polymerasen- RNA Polymerasen -
DNA-abhängige RNA-Polymerasen (T3, T7 Bacteriophage)
Eigenschaften:- Synthetisieren RNA von einem DNA Template ohne Primer, distinkte Promotor Erkennungssequenzen
Anwendung:- radioaktive Markierung von RNA (für Prozessierungsstudien)
- Synthese von RNA (für in vitroTranslationen)
Bedingungen:- Mg2+, DTT oder -Mercaptoethanol,
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III Polymerasen- Reverse Transkriptasen -
M-MLV Reverse Trancriptase (Moloney Murine Leukemia Virus)
Eigenschaften:- RNA-abhängige DNA-Polymerasen, 5‘-Exoribonuclease (RNase H) - gibt es auch ohne RNase H, 3‘-Exoribonuclease
Anwendung:- Erststrangsynthese von cDNA (RT-PCR Anwendungen)- Degradierung von RNA in RNA/DNA-Hybriden
Bedingungen:- Mg2+, Primer
Nukleasen
Phosphodiesterasen = spalten Phosphodiester-Bindungen innerhalb von Nukleinsäuren
Exonukleasen = spalten vom Ende (entweder 5‘ oder 3‘) einzelne Nukleotide ab
Endonukleasen = spalten beliebig innerhalb der Nukleinsäure, bis nurkurze Oligonukleotide übrig sind
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Nukleasen- DNA Exonukleasen -
Nuklease Bal31 (Alteromonas espejiani):
Eigenschaften:- doppel- und einzelsträngige 5‘- bzw. 3‘-Exonuklease
Anwendung:- Schrittweise Verkürzung von DNA (z.B. wenn man Promotoren oder Bereiche, die von Proteinen gebunden werden analysieren will)
Bedingungen: - Ca2+ und Mg2+
Nukleasen- DNA Exonukleasen -
Exonuklease III (E. coli):
Eigenschaften:- doppelsträngige 3‘-Exonuklease, besitzt auch RNAse H-Aktivität
Anwendung:- Unidirektionale Deletionen (da 3‘-Überhänge nicht angegriffen werden)- Herstellung von einzelsträngiger DNA
Bedingungen: - Mn2+ und Mg2+
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Nukleasen- DNA Endonukleasen -
Nuklease SI (Aspergillus oryzae):
Eigenschaften:- einzelsträngige DNA und RNA Endonuklease-aktivität
Anwendung:- „transcript mapping“- glätten von DNA-Enden- generieren von „Nicks“ in doppelsträngiger DNA- spalten von Hairpin-Strukturen
Bedingungen: - Zn2+ und pH 4,5
Nukleasen- DNA Endonukleasen -
DNase I (B. taurus):
Eigenschaften:- einzel- und doppelsträngige DNA-Endonuklease, als auch RNA/DNA-Hybride
Anwendung:- Degradation von DNA aus RNA Proben- „DNase I footprinting“ (Proteine schützen)- „Nick“ Translation
Bedingungen:- Mg2+ für „random nicks“, in Anwesenheit von Mn2+ wird auf beidseitig geschnitten